Гематологические и биохимические показатели крови бычков при использовании в качестве кормовой добавки гидролизата тушек норок

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Для повышения эффективности рубцового пищеварения исследователями разработано множество ферментных кормовых добавок. Проводится работа по изысканию кормовых добавок, улучшающих питание рубцовой микрофлоры, т. е. пребиотиков. Для этой цели предложен гидролизат животного белка. Представлены данные, отражающие динамику гематологических и биохимических показателей сыворотки крови бычков в возрасте 3-4 месяцев при включении в рацион кормовой добавки гидролизата тушек норок в дозах 5, 10 и 20 граммов на голову в сутки в течение 30 дней. Показано, что после завершения опыта у животных, получавших гидролизат в дозах 10 и 20 граммов на голову, отмечено достоверное снижение содержания лейкоцитов в пределах референсных значений и повышения процентного содержания лимфоцитов в лейкограмме. Изменение биохимических показателей групп опытных бычков характеризовалось дозозависимым статистически значимым повышением концентрации белка, мочевины и резервной щелочности. Концентрация общего билирубина, АЛТ, ЛДГ достоверно понижалась, АСТ - повышалась. Полученные результаты свидетельствуют о повышении иммунной реактивности организма животных на фоне применения кормовой добавки.

Полный текст

Введение

Показатели крови бычков при внесении им в качестве кормовой добавки белковых гидролизатов важны для совершенствования методов откорма крупного рогатого скота. В рубце крупного рогатого скота под действием ферментов рубцовой микрофлоры расщепляются клетчатка, легкоперевариваемые углеводы и белки. За сутки в нем синтезируются полноценный, содержащий все аминокислоты микробный белок, липиды и большое количество летучих жирных кислот [1—6]. При этом микробный белок рубца составляет более 50 % белка, перевариваемого крупным рогатым скотом, и его состав крайне необходим для адекватной работы пищеварительной системы [7—11]. Вместе с этим даже незначительное изменение рациона может привести к дисбалансу пищеварительной системы и способствовать утрате адекватного синтеза рубцового пищеварения, а как следствие — его дисфункции. Получены данные о том, что добавление ферментных кормовых добавок в состав рационов лактирующих коров приводит к повышению среднесуточных надоев, вместе с тем клинические и биохимические показатели крови откормочных животных могут дать обширное представление о любых изменениях в технологической цепи [11, 12—16]. Сравнительный анализ потребления корма, его переваривания, параметров ферментации, бактериального сообщества и их влияния на пищеварение рубца проведен во многих исследованиях [4, 7, 11, 17, 18]. Изыскание кормовых добавок с использованием гидролизата животного белка позволит увеличить концентрацию короткоцепочечных летучих жирных кислот и аммиака. Также следует отметить, что морфо-биохимический скрининг обладает достаточной чувствительностью и позволит в полной мере раскрыть механизмы влияния биологически активного вещества на организм животных, поэтому отслеживание динамики гематологических данных обеспечит контроль над состоянием животных.

Цель исследования — изучение влияния гидролизата тушек норок на гематологические и биохимические показатели сыворотки крови бычков на откорме.

Материалы и методы исследования

Работа выполнена на 20 бычках 3—4-месячного возраста в соответствии с международными стандартами GLP. Животные были разделены по принципу аналогов на 4 группы по 5 голов в каждой, из них сформировано 3 экспериментальных и одна группа контроля. При формировании опытных групп обращали внимание на упитанность животных, состояние кожных покровов, слизистых оболочек и опорно-двигательного аппарата.

Суточный рацион опытных животных включал: жом сухой — 0,13 кг; шрот подсолнечный — 0,29 кг; шрот рапсовый — 0,20 кг; сено разнотравное — 0,46 кг; сенаж козлятника — 0,86 кг; силос викоовсяный — 1,43 кг; дробленка овес — 0,27 кг; дробленка ячмень —0,27 кг; дробленка пшеница —0,27 кг; комбикорм К62-2-89—0,30 кг. В качестве кормовой добавки использовали гидролизат тушек норок, полученный по оригинальной технологии (патент РФ № 101202) [19]. Применяемый гидролизат содержит 17 аминокислот, в т. ч. 5 незаменимых, 6 макрои 18 микроэлементов.

Контрольная группа телят получала хозяйственный рацион. В основной рацион опытных групп добавляли по 5, 10 и 20 г гидролизата в течение 30 суток. На протяжении всего исследования за опытными бычками вели наблюдение. От всех животных перед началом опыта и через 30 дней наблюдения получали кровь для проведения гематологических и биохимических исследований. Гематологические и биохимические исследования сыворотки крови выполняли общепринятыми методами [20]. Результаты полученных исследований обрабатывали статистически с использованием программы Statistica 8.0 (Stat Soft Inc., США) и представляли в виде таблиц.

Результаты исследований и их обсуждение

Проведен сравнительный анализ данных при добавлении опытным животным к основному рациону различных доз гидролизата тушек норок (5, 10 и 20 г гидролизата в течение 30 суток). Результаты гематологических исследований приведены в табл. 1.

Из приведенных в табл. 1 цифровых данных видно, что у животных интактных и из подопытных групп содержание лейкоцитов превышает верхние физиологические границы. Следует отметить, что после завершения эксперимента у бычков опытных групп, получавших по 10 и 20 г на голову в сутки, лейкоциты достоверно (p<0,05) снижаются до средних физиологических значений в 1,53 и 1,35 раза соответственно. Кроме этого, в лейкограмме указанных групп бычков установлено статистически достоверное повышение относительного содержания лейкоцитов в пределах референтных значений.

У бычков, получавших гидролизат в дозе 5 г / голову в сутки, не отмечено достоверного изменения показателей крови.

При исследовании эффективности использования в качестве кормовой добавки гидролизата тушек норок в дозе 5, 10 и 20 г гидролизата в течение 30 суток к основному рациону при откорме бычков мы также провели биохимические исследования крови опытных животных (табл. 2).

Анализ приведенных в табл. 2 данных свидетельствует о том, что ежедневное скармливание гидролизата из тушек норок бычкам опытных групп в дозе 10 и 20 г / голову в течение 30 дней вызывает статистически значимое повышение концентрации общего белка в сыворотке крови до верхней физиологических границы — 84,60±2,35 и 82,70±4,81 г/л соответственно.

Кроме того, у всех бычков опытных групп отмечено дозозависимое снижение концентрации общего билирубина и активности аланинаминотрансферазы. В то время как активность аспартатаминотрансферазы при скармливании 5, 10 и 20 г гидролизата, наоборот, достоверно (p < 0,05) повышалась в 1,82; 3,32 и 4,45 раза соответственно. Активность лактатдегидрогеназы снижалась только у животных, получавших гидролизат в дозах 10 и 20 г на голову. Применение гидролизата в указанных дозах приводило к повышению резервной щелочности сыворотки крови. Отмечено также снижение в физиологических пределах содержания каротина у подопытных животных.

Таблица 1. Результаты клинического анализа крови контрольных и подопытных бычков

Показатели

Референсные значения

Контроль

5 г/гол

10 г/гол

20 г/гол

До

После

До

После

До

После

До

После

Эритроциты, ×1012/л

5,0—7,5

8,13±0,70

8,31±0,72

7,61±0,44

7,60±0,99

7,32±0,48

7,82±0,50

7,47±0,50

7,52±0,32

Гематокрит, %

28—38

45,83±1,90

46,35±0,79

45,83±1,90

46,35±0,79

45,78±1,90

46,42±1,54

45,90±4,15

46,98±1,55

Гемоглобин, г/л

90—120

133,78±2,50

134,90±1,99

135,28±4,15

137,60±2,19

136,67±2,94

137,83±2,32

135,17±2,84

135,90±12,49

СОЭ, мм/ч

1—3

1,00±0,00

1,00±0,00

1,00±0,00

1,00±0,00

1,00±0,00

1,33±0,52

1,50±0,84

1,17±0,41

Лейкоциты, ×109/л

5,0—10,0

12,53±3,80

12,36±2,57

11,75±2,56

11,94±1,96

12,01±1,79

7,85±1,89*

11,82±2,20

8,78±1,28*

Палочк. нейтрофилы, %

2—5

1,17±0,41

1,50±0,55

1,17±0,41

1,50±0,55

1,00±0,00

1,00±0,00

1,50±0,55

1,50±0,55

Сегмент. нейтрофилы, %

25—50

53,17±11,65

52,83±11,63

46,00±5,55

46,67±7,17

40,00±5,97

37,50±10,03

38,50±8,87

38,50±8,92

Эозинофилы, %

3—8

2,50±1,64

2,50±1,38

2,50±1,64

2,50±1,38

2,50±1,87

3,00±1,79

3,00±1,67

2,83±1,33

Моноциты, %

3—10

3,00±1,90

3,00±1,67

3,00±1,90

3,00±1,67

2,50±1,76

2,17±1,60

2,67±1,37

2,83±1,47

Лимфоциты, %

40—70

40,17±9,89

40,17±9,89

44,17±4,83

44,67±5,92

40,67±10,21

56,00±8,88*

44,33±2,73

55,83±8,57*

Тромбоциты, ×109/л

269—700

323,50±57,11

323,50±57,11

306,50±27,22

307,33±32,93

258,67±28,27

265,33±20,38

268,17±11,62

276,17±8,13

* Статистически достоверные изменения показателей по отношению к контролю при р < 0,05.

 

Table 1. The results of a clinical blood test of control and experimental bulls

Indicators

Reference values

Control

5 g/head

10 g/head

20 g/head

Before

After

Before

After

Before

After

Before

After

Erythrocytes, ×1012/l

5.0—7.5

8.13±0.70

8.31±0.72

7.61±0.44

7.60±0.99

7.32±0.48

7.82±0.50

7.47±0.50

7.52±0.32

Hematocrit,%

28—38

45.83±1.90

46.35±0.79

45.83±1.90

46.35±0.79

45.78±1.90

46.42±1.54

45.90±4.15

46.98±1.55

Hemoglobin, g/l

90—120

133.78±2.50

134.90±1.99

135.28±4.15

137.60±2.19

136.67±2.94

137.83±2.32

135.17±2.84

135.90±12.49

ESR, mm/h

1—3

1.00±0.00

1.00±0.00

1.00±0.00

1.00±0.00

1.00±0.00

1.33±0.52

1.50±0.84

1.17±0.41

Leukocytes, ×109/l

5.0—10.0

12.53±3.80

12.36±2.57

11.75±2.56

11.94±1.96

12.01±1.79

7.85±1.89*

11.82±2.20

8.78±1.28*

Stick. neutrophils,%

2—5

1.17±0.41

1.50±0.55

1.17±0.41

1.50±0.55

1.00±0.00

1.00±0.00

1.50±0.55

1.50±0.55

Segment. neutrophils,%

25—50

53.17±11.65

52.83±11.63

46.00±5.55

46.67±7.17

40.00±5.97

37.50±10.03

38.50±8.87

38.50±8.92

Eosinophils,%

3—8

2.50±1.64

2.50±1.38

2.50±1.64

2.50±1.38

2.50±1.87

3.00±1.79

3.00±1.67

2.83±1.33

Monocytes,%

3—10

3.00±1.90

3.00±1.67

3.00±1.90

3.00±1.67

2.50±1.76

2.17±1.60

2.67±1.37

2,83±1.47

Lymphocytes,%

40—70

40.17±9.89

40.17±9.89

44.17±4.83

44.67±5.92

40.67±10.21

56.00±8.88*

44.33±2.73

55.83±8.57*

Platelets, ×109/l

269—700

323.50±57.11

323.50±57.11

306.50±27.22

307.33±32.93

258.67±28.27

265.33±20.38

268.17±11.62

276.17±8.13

*Statistically significant changes in indicators compared to control at p < 0.05.

 

Таблица 2. Биохимические показатели контрольных и подопытных бычков

Показатели

Контроль

5 г/гол

10 г/гол

20 г/гол

До

После

До

После

До

После

До

После

Общий белок, г/л

69,14±7,15

66,98±13,43

66,38±6,63

71,40±7,27

69,42±10,91

84,60±2,35*

69,60±4,18

82,70±4,81*

Альбумин, г/л

35,36±2,62

36,14±1,84

34,04±1,46

34,72±2,48

34,68±1,67

37,00±1,57

34,18±6,91

35,30±3,59

Глюкоза, ммоль/л

1,92±0,51

1,74±0,28

1,94±0,34

2,04±0,21

1,38±0,22

1,44±0,34

1,34±0,52

1,54±0,18

Общий билирубин, мкмоль/л

7,86±0,90

7,72±0,38

7,04±1,04

6,60±0,72*

7,08±3,28

3,20±1,23*

7,98±3,47

2,72±0,86*

Аспартатаминотрансфераза, Ед/л

24,80±3,27

27,40±2,88

23,02±4,30

42,00±9,35*

24,78±4,55

82,40±4,93*

24,68±2,54

110,00±11,90*

Аланинаминотрансфераза, Ед/л

105,02±4,05

96,90±9,13

106,00±12,63

65,60±4,72*

107,32±44,15

20,16±6,35*

101,53±26,96

16,44±4,79*

Лактатдегидрогеназа, Ед/л

305,14±16,80

305,26±5,80

311,84±7,97

313,00±10,62

316,40±11,26

236,66±8,95*

332,20±23,22

249,32±23,84*

Мочевина, ммоль/л

3,74±0,54

3,55±0,43

3,38±1,54

3,23±1,68

3,01±0,88

3,96±0,72

3,17±0,61

4,19±0,76*

Креатинин, мкмоль/л

67,98±9,55

75,38±21,36

70,64±25,12

58,92±16,24

81,24±31,49

84,04±13,32

80,38±19,83

71,46±7,53

Кальций, ммоль/л

2,34±0,23

2,26±0,23

2,54±0,41

2,36±0,23

3,84±3,29

2,86±1,65

3,70±2,66

3,30±1,48

Фосфор, ммоль/л

0,94±0,17

0,94±0,21

0,98±0,08

1,06±0,09

0,96±0,13

0,87±0,22

1,09±0,06

1,14±0,14

Каротин, мг/%

0,44±0,04

0,41±0,07

0,75±0,11

0,51±0,20*

0,63±0,16

0,45±0,05*

0,53±0,10

0,39±0,08*

Резервная щелочность, мг %

300,00±64,81

306,00±68,41

308,00±22,80

312,00±26,83

280,00±83,67

490,00±30,00*

260,00±23,72

484,00±16,73*

*Статистически достоверные изменения показателей по отношению к контролю при р < 0,05.

Тable 2. Biochemical parameters of control and experimental bulls

Indicators

Control

5 g/head

10 g/head

20 g/head

Before

After

Before

After

Before

After

Before

After

Total protein, g/l

69.14±7.15

66.98±13.43

66.38±6.63

71.40±7.27

69.42±10.91

84.60±2.35*

69.60±4.18

82.70±4.81*

Albumin, g/l

35.36±2.62

36.14±1.84

34.04±1.46

34.72±2.48

34.68±1.67

37.00±1.57

34.18±6.91

35.30±3.59

Glucose, mmol/l

1.92±0.51

1.74±0.28

1.94±0.34

2.04±0.21

1.38±0.22

1.44±0.34

1.34±0.52

1.54±0.18

Total bilirubin, µmol/l

7.86±0.90

7.72±0.38

7.04±1.04

6.60±0.72*

7.08±3.28

3.20±1.23*

7.98±3.47

2.72±0.86*

Aspartateaminotransferase, U/l

24.80±3.27

27.40±2.88

23.02±4.30

42.00±9.35*

24.78±4.55

82.40±4.93*

24.68±2.54

110.00±11.90*

Alanineaminotransferase, U/l

105.02±4.05

96.90±9.13

106.00±12.63

65.60±4.72*

107.32±44.15

20.16±6.35*

101.53±26.96

16.44±4.79*

Lactatedehydrogenase, U/l

305.14±16.80

305.26±5.80

311.84±7.97

313.00±10.62

316.40±11.26

236.66±8.95*

332.20±23.22

249.32±23.84*

Urea, mmol/l

3.74±0.54

3.55±0.43

3.38±1.54

3.23±1.68

3.01±0.88

3.96±0.72

3.17±0.61

4.19±0.76*

Creatinine, µmol/l

67.98±9.55

75.38±21.36

70.64±25.12

58.92±16.24

81.24±31.49

84.04±13.32

80.38±19.83

71.46±7.53

Calcium, mmol/l

2.34±0.23

2.26±0.23

2.54±0.41

2.36±0.23

3.84±3.29

2.86±1.65

3.70±2.66

3.30±1.48

Phosphorus, mmol/l

0.94±0.17

0.94±0.21

0.98±0.08

1.06±0.09

0.96±0.13

0.87±0.22

1.09±0.06

1.14±0.14

Carotene, mg/%

0.44±0.04

0.41±0.07

0.75±0.11

0.51±0.20*

0.63±0.16

0.45±0.05*

0.53±0.10

0.39±0.08*

Reserve alkalinity, mg/%

300.00±64.81

306.00±68.41

308.00±22.80

312.00±26.83

280.00±83.67

490.00±30.00*

260.00±23.72

484.00±16.73*

*Statistically significant changes in indicators in relation to control at p < 0.05.

 

Таким образом, полученные результаты подтверждают положительное влияние гидролизата из тушек норок на организм бычков — улучшение гематологических и биохимических показателей крови. Совершенствование методов откорма крупного рогатого скота при использовании белковых кормовых добавок может существенно сократить период откорма, снизить частоту возникновения вздутия у откормочного скота, а также повысить рентабельность производства и продуктивность животных.

Заключение

Полученные результаты свидетельствуют о положительном влиянии гидролизата из тушек норок на организм бычков. После 30-дневного скармливания гидролизата в дозах 10 и 20 г на голову в сутки у подопытных животных отмечено снижение содержания лейкоцитов и повышение процентного содержания в лейкограмме лимфоцитов до физиологического уровня. Нормализация концентрации лейкоцитов в крови свидетельствует об отсутствии в организме воспалительных процессов, а повышение удельной концентрации лимфоцитов в лейкограмме — о повышении иммунной реактивности организма животных. Повышение концентрации общего белка в сыворотке крови до верхних физиологических пределов согласуется с повышением среднесуточных привесов подопытных животных, оно, вероятно, обусловлено увеличением синтеза микробного белка рубцовой флорой. Статистически достоверное дозозависимое снижение общего билирубина и активности печеночных ферментов в пределах референсных значений указывает на нормализацию функции печени подопытных бычков. Показатели щелочного резерва отражают содержание бикарбонатов в крови животных. У интактных животных и подопытных групп они существенно ниже физиологических пределов, что свидетельствует о наличии у них метаболического ацидоза, связанного с концентратным типом кормления. Включение в хозяйственный рацион бычков гидролизата из тушек норок приводит к нормализации показателей резервной щелочности. Механизм этого процесса объясняется увеличением синтеза пропионовой кислоты в рубце в активизации процесса неогликогинеза.

×

Об авторах

Виктор Николаевич Денисенко

Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина

Email: dvet@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-4704-0774

доктор ветеринарных наук, профессор кафедры диагностики болезней, терапии, акушерства и репродукции животных

Российская Федерация, 109472, г. Москва, ул. Академика Скрябина, д. 23

Виталий Анатольевич Балыков

Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина

Email: ginza17@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6689-4452

аспирант кафедры диагностики болезней, терапии, акушерства и репродукции животных

Российская Федерация, 109472, г. Москва, ул. Академика Скрябина, д. 23

Роман Васильевич Рогов

Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина

Email: r.v.rogov86@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-3010-5714

кандидат биологических наук, доцент кафедры диагностики болезней, терапии, акушерства и репродукции

Российская Федерация, 109472, г. Москва, ул. Академика Скрябина, д. 23

Юлия Сабировна Круглова

Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина

Автор, ответственный за переписку.
Email: y7272@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2953-0745

кандидат ветеринарных наук, доцент кафедры диагностики болезней, терапии, акушерства и репродукции

Российская Федерация, 109472, г. Москва, ул. Академика Скрябина, д. 23

Список литературы

  1. Руденко П.А., Ватников Ю.А., Руденко А.А., Руденко В.Б. Эпизоотический анализ животноводческих ферм, неблагополучных по факторным инфекциям // Научная жизнь. 2020. Т. 15. № 4 (104). С. 572-585. doi: 10.35679/1991-9476-2020-15-4-572-585
  2. Tothova C, Nady O, Kovac G. Serum proteins and their diagnostic utility in veterinary medicine, a review. Veterinarni Medicina. 2016; 61(9):475-496. doi: 10.17221/19/2016-VETMED
  3. Vatnikov Y, Yousefi M, Engashev S, Rudenko P, Lutsay V, Kulikov E, et al. Clinical and hematological parameters for selecting the optimal dose of the phytopreparation «Deprim», containing an extract of the herb Hypericum perforatum L., in husbandry. International Journal of Pharmaceutical Research. 2020; 12(Suppl.1):2731-2742. doi: 10.31838/ijpr/2020.SP1.401
  4. аБуряков Н.П., Хардик И.В. Ферментный препарат в кормлении лактирующих коров // Комбикорма. 2019. № 3. С. 52-55. doi: 10.25741/2413-287X-2019-03-3-054
  5. Norby B, Bartlett PC, Byrem TM, Erskine RJ. Effect of infection with bovine leukemia virus on milk production in Michigan dairy cows. J Dairy Sci. 2016; 99(3):2043-2052. doi: 10.3168/jds.2015-10089.
  6. Rudenko P, Sachivkina N, Vatnikov Y, Shabunin S, Engashev S, Kontsevaya S, et al. Role of microorganisms isolated from cows with mastitis in Moscow region in biofilm formation. Veterinary World. 2021; 14(1):40-48. doi: 10.14202/vetworld.2021.40-48
  7. Паули А.С., Фаткуллин Р.Р. Белковый обмен в организме коров в условиях техногенной агроэкосистемы // Генетика и разведение животных. 2019. № 1. С. 77-80. doi: 10.31043/2410-2733-2019-1-77-80
  8. Vatnikov Y, Donnik I, Kulikov E, Karamyan A, Notina E, Bykova I, et al. Effectiveness of Hypericum perforatum L. phytosorbent as a part of complex therapy for acute non-specific bronchopneumonia. International Journal of Pharmaceutical Research. 2020; 12(Suppl.1):1108-1116. doi: 10.31838/ijpr/2020.SP1.165
  9. Roland L, Drillich M, Iwersen M. Hematology as a diagnostic tool in bovine medicine. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 2014; 26(5):592-598. doi: 10.1177/1040638714546490
  10. Palikov VA, Palikova YA, Borozdina NA, Nesmeyanova EN, Rudenko PA, Kazakov VA, et al. A novel view of the problem of Osteoarthritis in experimental rat model. Research Results in Pharmacology. 2020; 6(2):19-25. doi: 10.3897/rrpharmacology.6.51772
  11. Балыков В.А. Продуктивность бычков при применении в качестве кормовой добавки гидролизата животного белка // Сборник трудов Национальной научно-практической конференции с международным участием «Актуальные проблемы ветеринарной морфологии и высшего зооветеринарного образования». Москва, 2019. С. 262-266.
  12. Денисенко В.Н., Балыков В.А. Рубцовое пищеварение у бычков при скармливании гидролизата мышечной ткани норок // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. 2018. № 12. С. 112-116.
  13. Vatnikov Y, Donnik I, Kulikov E, Karamyan A, Sachivkina N, Rudenko P, et al. Research on the antibacterial and antimycotic effect of the phytopreparation Farnesol on biofilm-forming microorganisms in veterinary medicine. International Journal of Pharmaceutical Research. 2020; 12(Suppl.2):1481-1492. doi: 10.31838/ijpr/2020.SP2.164
  14. Руденко П.А., Руденко А.А., Ватников Ю.А., Кузнецов В.И., Ягников С.А. Клинико-биохимические параметры крови при остром гастроэнтерите у собак // Вестник КрасГАУ. 2020. № 7 (160). С. 133-139. doi: 10.36718/1819-4036-2020-7-133-139
  15. Иванов А. Снижаем долю концентратов - повышаем надои // Животноводство России. 2015. № 12. С.42-43.
  16. Mader TL, Griffin D. Management of Сattle Exposed to Adverse Environmental Conditions. Veterinary Clinics: Food Animal Practice. 2015; 31(2):247-258. doi: 10.1016/j.cvfa.2015.03.006
  17. Калюжный И.И., Баринов Н.Д., Коробов А.В. Метаболические нарушения у высокопродуктивных коров. Саратов, 2010. 104 c.
  18. Vatnikov Y, Shabunin S, Kulikov E, Karamyan A, Murylev V, Elizarov P, et al. The effi of therapy the piglets gastroenteritis with combination of Enrofloxacin and phytosorbent Hypericum perforatum L. International Journal of Pharmaceutical Research. 2020; 12(Suppl.2):3064-3073. doi: 10.31838/ijpr/2020.SP2.373
  19. Албулов А.И., Денисенко В.Н., Самуйленко А.Я., Рогов Р.В., Абрамов П.Н. и др. Способ получения белкового гидролизата из мясокостного сырья тушек норок для парентерального применения. Патент на изобретение № 3 101202. Приоритет от 15.04.13. Зарегистрирован 06.11.14.
  20. Кондрахин И.П., Архипов А.В., Левченко В.И., Таланов Г.А., Фролова Л.А., Новиков В.Э. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики. М.: КолосС, 2004. 519 с.

© Денисенко В.Н., Балыков В.А., Рогов Р.В., Круглова Ю.С., 2022

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах