Агрохимическая оценка влияния вермикулита на снижение подвижности ионов аммония
- Авторы: Кременецкая И.П.1, Слуковская М.В.1,2,3, Иванова Л.А.2,4, Ярцева М.А.4, Иванова Т.К.1,2
-
Учреждения:
- Институт химии и технологии редких элементов и минерального сырья им. И.В. Тананаева — обособленное подразделение федерального государственного бюджетного учреждения науки ФИЦ Кольский научный центр РАН
- ФИЦ Кольский научный центр РАН
- Российский университет дружбы народов
- Полярно-альпийский ботанический сад-институт КНЦ РАН
- Выпуск: Том 20, № 4 (2025)
- Страницы: 606-617
- Раздел: Почвоведение и агрохимия
- URL: https://agrojournal.rudn.ru/agronomy/article/view/20270
- DOI: https://doi.org/10.22363/2312-797X-2025-20-4-606-617
- EDN: https://elibrary.ru/CDGCKT
- ID: 20270
Цитировать
Аннотация
Методами фитотестирования почвосмесей с определением форм азота выполнена агрохимическая оценка влияния вспученного вермикулита на снижение подвижности ионов аммония. В исследовании применена мочевина, которую вносили в гранулированном или растворенном виде в широком диапазоне величины дозы азота, в т. ч. с превышением предельно допустимой концентрации. Использовали два вида грунта, отличающихся по содержанию органического компонента. Показано, что вермикулит эффективно снижает содержание обменной формы аммония, фиксированный аммоний превращается в нитратную форму медленнее по сравнению с обменным аммонием
Полный текст
Введение
Интенсивное применение минеральных азотных удобрений на современном этапе развития агротехнологий привело к ряду негативных последствий, таких как нарушение природного биогеохимического цикла азота, деградация свойств почв и угнетение процессов их функционирования [1, 2]. Эвтрофикация водоемов в результате избыточного поступления нитратов, эмиссия соединений азота из почвы в атмосферу, загрязнение нитратами растительной продукции являются следствием положительного баланса азота в агросистемах из-за нерационального применения удобрений [3]. Для достижения максимальной продуктивности сельскохозяйственных культур применяется дозировка удобрений, часто превышающая экономически обоснованные нормы, при которых прирост урожайности окупает затраты на удобрения [4].
С увеличением стоимости средств химизации из-за повышения цен на энергоносители на протяжении 1990‑х гг. активное использование минеральных удобрений стало экономически менее выгодным. Кроме того, в этот же период установлено, что активное применение удобрений сопряжено с экологическими рисками. В развитых странах акцент сместился на достижение устойчивых урожаев при соблюдении экологически и экономически оптимальных доз удобрений, а не на получение максимальной урожайности [1].
Современные стратегии устойчивого и экологически безопасного сельского хозяйства сосредоточены на оптимизации азотного режима почвы с целью увеличения эффективности производства растений. Один из ключевых подходов состоит в разработке технологий внесения минеральных и органических удобрений, позволяющих синхронизировать период доступности азота с фазами активного его потребления растениями. Дополнительно разрабатываются биологические методы ингибирования нитрификации, предлагающие альтернативу химическим ингибиторам.
Доступные формы азота — аммонийная и нитратная — в теоретических подходах к питанию растений считаются равноценными [5]. Тем не менее, исследования показывают, что аммоний активно удерживается почвенным комплексом в почвах с высокой емкостью катионного обмена, и в жидкую фазу почвы попадает лишь незначительная его часть. Аммоний, попавший в жидкую фазу, подвергается нитрификации, вследствие чего основным источником азота для растений становятся нитраты [5]. Например, на примере овса показано, что удобрения, такие как NPK и органические, оказывают значительное влияние на урожайность растений благодаря запасам нитратов (N-NO3), которые накапливаются до начала всходов в слое почвы 0–40 см. Между содержанием нитратов в почве и урожайностью овса обнаружена высокая корреляция [5].
При анализе азотного режима почвы важно учитывать не только общее содержание азота в различных формах, но и продолжительность их существования в почве, а также скорость их образования и потребления [1]. Самые короткие жизненные циклы (от 1 до 10 часов) имеют растворимые органические соединения [6]. При достаточном уровне доступного углерода продолжительность существования для NH4+ и NO3– составляет менее суток, а для микробной биомассы — до 11 суток. В условиях недостатка углерода этот период увеличивается до трех суток для NH4+, до 25…136 суток для NO3– и до 360…425 суток для микробной биомассы.
Различные биотические и абиотические процессы оказывают влияние на подвижность азота в почве. Абиотическая мобилизация азота происходит за счет десорбции обменно-поглощенного и освобождения фиксированного N-NH4+ при увеличении влажности почвы и концентрации катионов, а также в условиях, способствующих диспергированию глинистых частиц и органоминеральных коллоидов. В то же время адсорбция N-NH4+, аминокислот и амидов органическими и минеральными частицами, фиксация N-NH4+ глинистыми минералами, удержание нитратов в микропорах и консервация простых органических соединений азота в микроагрегатах способствуют стабилизации азота на абиотическом уровне [7].
Цель исследования — агрохимическая оценка применения вермикулита для оптимизации питания растений азотом. Можно ожидать, что снижение подвижности аммонийного азота вермикулитом [8, 9] будет способствовать ингибированию процесса его нитрификации.
Материалы и методы исследования
Экспериментальные исследования выполнены с использованием гранулированной мочевины и двух типов грунта. Первый представляет собой образцовую (референсную) смесь для определения хронической токсичности с низким содержанием органического вещества [1]. Смесь рекомендуется составлять из песка, глины и торфа при соотношении, мас.%: 70:20:10. Второй грунт — огородная почва — характеризуется высоким содержанием органического вещества. Свойства исходных грунтов приведены при описании результатов исследования.
Термовермикулит фракции 1–2 мм получен из вермикулитового концентрата Ковдорского месторождения путем обжига на электрической модульно-спусковой печи конструкции Нижегородова при температуре 550 °C [10, 11]. Материал имеет следующие характеристики: насыпная плотность 500 г/дм3, влагоудерживающая способность 100 мас.%, pH(H2O) 9.2, pH(KCl) 7.4, обменная емкость 80…150 мг-экв/100 г.
В первой серии экспериментов (маркировка МП) часть песка заменяли вермикулитом в количестве 5 и 10 мас.% от общей массы почвосмеси (табл. 1). Мочевину вводили в виде гранул, распределяя в верхней части вегетационного сосуда на глубину 10 см. Почвосмеси в количестве 2 кг помещали в вегетационный сосуд объемом 5 л, на дно которого укладывали дренажный слой из керамзита. Условия опыта соответствуют избыточному содержанию азота, дополнительное количество которого по сравнению с содержанием в исходном грунте составило 450–1350 мг/кг при ПДК 300 мг/кг. В качестве контроля поставлен опыт без вермикулита и без добавления мочевины (МП10). Все опыты выполнены в трех повторностях.
Почвосмеси проанализированы на острую и хроническую токсичность с применением горчицы сарептской (Brassica juncea (L.) Czern) и овса посевного (Avena sativa L.) соответственно, продолжительность экспозиции 7 и 30 суток.
Таблица 1
Состав почвосмесей в опыте с низким содержанием органического вещества
Маркировка опытов | Количество компонентов почвосмеси, мас.% | Дозировкамочевины, г/кг | |||
Песок | Вермикулит | Глина | Торф | ||
МП10 контроль | 70 | 0 | 20 | 10 | 0 |
МП1 | 70 | 0 | 20 | 10 | 1 |
МП2 | 70 | 0 | 20 | 10 | 2 |
МП3 | 70 | 0 | 20 | 10 | 3 |
МП4 | 65 | 5 | 20 | 10 | 1 |
МП5 | 65 | 5 | 20 | 10 | 2 |
МП6 | 65 | 5 | 20 | 10 | 3 |
МП7 | 60 | 10 | 20 | 10 | 1 |
МП8 | 60 | 10 | 20 | 10 | 2 |
МП9 | 60 | 10 | 20 | 10 | 3 |
Источник: выполнено И.П. Кременецкой, М.В. Слуковской.
Во второй серии экспериментов (маркировка МО) в качестве тест-культуры использовали огурец обыкновенный (Cucumis sativus L.)., семена которого предварительно проращивали. Перед внесением в грунт вермикулит обогащали минеральным азотом путем внесения раствора мочевины с разной концентрацией (3, 6 и 9 г N/л) для достижения количества внесенного в почву азота 200, 400 и 600 мг N/кг. Затем вермикулит перемешивали с почвой. Такой способ облегчает процесс равномерного распределения удобрения в объеме почвосмеси. В контрольных опытах (без вермикулита) раствор мочевины вносили в почву и также тщательно перемешивали. Опыт выполнен в трех повторностях (опыт без вермикулита и с содержанием добавленного азота 200 мг N/кг — в девяти повторностях).
По окончании опытов в почвосмесях определяли содержание водорастворимых нитратов и обменного аммония (раствор KCl с концентрацией 1 моль/л [2]) при соотношении материала и воды 1:5, в солевой вытяжке при 1:2,5. Раствор от материала отделяли методом центрифугирования при скоростном режиме 4000 об/мин в течение 30 минут. Метод определения является визуально-калориметрическим, аналогичным методу по ГОСТ 26488–85 [3]. Биохимические показатели растений овса определены с помощью листового спектрометра CI‑710s (SpectraVue).
Результаты исследования и обсуждение
В первой серии МП исследовано влияние вермикулита на распределение азота по формам нахождения в почвогрунте с низким содержанием органической части (10 мас.%). Контрольная почвосмесь характеризуется крайне низким содержанием подвижных форм азота, нитратный азот отсутствует, а содержание N(NH4+) составляет 2 мг N/кг (табл. 2). В опытных вариантах содержание обменного NH4+ увеличивается по мере увеличения дозы мочевины, в то время как содержание NO3– изменяется в узком диапазоне от 35 до 40 мг N/кг (табл. 2). Добавление вермикулита кардинально, в несколько раз, снижает содержание обменного аммония в почвосмесях.
Таблица 2
Содержание азота и показатели токсичности почвосмесей
Маркировка опытов | Содержание азота N, мг/кг | Всхожесть горчицы | Длина (овес), см | |||
Внесено | N(NH4+) | N(NO3–) | Растение | Корень | ||
МП10 контроль | 0 | 2 | 0 | 100 | 28,5 | 7,6 |
МП1 | 450 | 10 | 35 | 50 | 33,9 | 4,9 |
МП2 | 900 | 20–60 | 35 | 2 | 32,7 | 4,2 |
МП3 | 1350 | 200 | 35 | 0 | 34,3 | 3,6 |
МП4 | 450 | 5 | 35 | 70 | 37,1 | 5,9 |
МП5 | 900 | 15 | 35 | 5 | 35,2 | 6,1 |
МП6 | 1350 | 50 | 35 | 2 | 26,2 | 4,0 |
МП7 | 450 | 3 | 35 | 100 | 35,9 | 6,6 |
МП8 | 900 | 5 | 40 | 20 | 34,5 | 6,5 |
МП9 | 1350 | 10 | 40 | 10 | 25,1 | 4,6 |
Источник: выполнено И.А. Мосендз, Т.К. Ивановой.
Острая токсичность почвосмесей тем больше, чем больше в них обменного аммония. Синхронно со снижением обменного аммония снижается острая токсичность почвосмесей (табл. 2, рис. 1). Данное наблюдение свидетельствует о токсическом воздействии обменной формы аммония.
Овес (тест-культура для определения хронической токсичности) характеризуется высокой пластичностью, т. е. способен адаптироваться к неблагоприятным условиям в широком диапазоне воздействия стрессового фактора [12].
Одним из ранних признаков повреждающего действия неблагоприятных факторов на растения является торможение ростовых процессов, что наблюдалось в первые несколько дней прорастания семян (рис. 2).
По окончании опыта продолжительностью 30 суток биометрические показатели растений выровнялись и статистически значимо не отличались по вариантам эксперимента (средние значения длины растения и корня показано в табл. 2). Можно лишь отметить тот факт, что в контрольном опыте длина корня заметно больше по сравнению с экспериментальными вариантами. В экспериментальных вариантах корни располагались преимущественно на поверхности субстрата, проникая вглубь на незначительную глубину. Данное наблюдение подтверждает токсичность субстратов, наиболее выраженную, судя по длине корней, в вариантах с наибольшей дозой мочевины (МП 3, 6, 9).
Рис. 1. Внешний вид проростков горчицы: цифрами обозначены номера вариантов
Источник: выполнено И.А. Мосендз, Т.К. Ивановой.
Рис. 2. Внешний вид проростков овса: цифрами обозначены номера вариантов
Источник: выполнено И.А. Мосендз, Т.К. Ивановой.
По биохимическим показателям растений статистически значимых различий между вариантами опыта не обнаружено (табл. 3). Значения индекса SPAD (показатель концентрации листового хлорофилла) в опытах МП 4–6 несколько выше по сравнению с контролем и другими экспериментальными вариантами. У растений в тех же опытах более высокие значения показателя SIPI — структурного индекса интенсивности пигментов, который хорошо согласуется с эффективностью усвоения углерода и активностью роста, а также тесно связан с поглощением фотосинтетически активной радиации.
Каротиноиды (CRI1) выполняют функции поглощения света растениями, а также указывают на наличие ослабленных растений (содержат большее количество каротиноидов). Данный показатель не изменяется по вариантам эксперимента, что подтверждает высокую адаптивность использованной тест-культуры (овес посевной). Универсальный индикатор наличия зеленой здоровой растительности (CNDVI) — показатель количества фотосинтетически активной биомассы, чем больше зеленая фитомасса, тем выше индекс. Для данного индекса (как и для SPAD) наблюдаются более высокие значения в опытах МП 4–6. На основании биохимических показателей можно предположить, что содержание вермикулита 5 мас.% соответствует наиболее благоприятным условиям произрастания растений.
Таблица 3
Биохимические показатели растений (Cucumis sativus L.)
Маркировка опыта | Биохимические показатели растений | |||||||
SPAD | SIPI | CRI1 | CNDVI | |||||
сред.* | дов. инт. | сред. | дов. инт. | сред. | дов. инт. | сред. | дов. инт. | |
МП10 | 14,6 | 7,9 | 0,65 | 0,12 | 0,036 | 0,019 | 0,26 | 0,15 |
МП1 | 15,2 | 2,9 | 0,60 | 0,06 | 0,030 | 0,008 | 0,25 | 0,05 |
МП2 | 16,8 | 7,2 | 0,63 | 0,08 | 0,034 | 0,012 | 0,27 | 0,11 |
МП3 | 22,2 | 9,2 | 0,63 | 0,05 | 0,032 | 0,009 | 0,28 | 0,06 |
МП4 | 25,2 | 10,9 | 0,65 | 0,03 | 0,034 | 0,007 | 0,27 | 0,05 |
МП5 | 23,0 | 4,4 | 0,69 | 0,03 | 0,043 | 0,009 | 0,33 | 0,03 |
МП6 | 22,7 | 6,6 | 0,99 | 0,01 | 0,047 | 0,014 | 0,34 | 0,05 |
МП7 | 16,9 | 2,5 | 0,64 | 0,02 | 0,037 | 0,007 | 0,27 | 0,04 |
МП8 | 25,6 | 33,5 | 0,67 | 0,12 | 0,039 | 0,007 | 0,32 | 0,13 |
МП9 | 19,9 | 8,6 | 0,69 | 0,16 | 0,043 | 0,051 | 0,27 | 0,09 |
Примечание. *сред. — среднее значение, дов. инт. — доверительный интервал.
Источник: выполнено И.А. Мосендз, М.В. Слуковской.
Во второй серии эксперимента исследовано влияние вермикулита на содержание форм азота при высоком содержании органического компонента в почвосмеси (табл. 4). В опыте без добавления вермикулита избыток минерального азота оказывает токсическое действие на тест-культуру (огурец), количество погибших растений составляет 1–2 экземпляра в опытах с трехкратной повторностью. В вариантах с вермикулитом при тех же количествах добавленного в составе мочевины азота наблюдается 100% выживаемость растений. По количеству листьев более высокие показатели зафиксированы в серии с добавлением 10 % вермикулита, а по количеству плодов — в серии с 5 % вермикулита. В этой же серии больше бутонов и цветов.
Таблица 4
Схема и результаты эксперимента с высоким содержанием азота
Маркировка | Содержание | Количество добавл. | Содержание N, мг/кг | Растения, выжившие / всего | Количество на одно растение | |||||
NH4+ | NO3– | Сумма N | Листья | Бутоны | Цветы | Плоды | ||||
ПО 1 | 0 | 0 | 20 | 55 | 75 | 2/3 | 10 | 6 | 3 | 0,5 |
ПО 2 | 0 | 200 | 20 | 55 | 75 | 3/9 | 9 | 6 | 3 | 1,3 |
ПО 3 | 0 | 400 | 40 | 45 | 85 | 1/3 | 11 | 11 | 1 | 0 |
ПО 4 | 0 | 600 | 30 | 50 | 80 | 2/3 | 7 | 0,5 | 1,5 | 0,5 |
ПО 7 | 5 | 0 | 20 | 55 | 75 | 3/3 | 10 | 5 | 3 | 1,3 |
ПО 8 | 5 | 200 | 10 | 55 | 65 | 3/3 | 11 | 4 | 3,3 | 1 |
ПО 9 | 5 | 400 | 15 | 45 | 60 | 3/3 | 11,3 | 5,6 | 2,3 | 2,3 |
ПО 10 | 5 | 600 | 30 | 45 | 75 | 3/3 | 11 | 7 | 2 | 1,6 |
ПО 11 | 10 | 0 | 40 | 45 | 85 | 3/3 | 8,6 | 2,6 | 1,6 | 0 |
ПО 12 | 10 | 200 | 30 | 45 | 75 | 3/3 | 8,6 | 3,3 | 1,3 | 0 |
ПО 13 | 10 | 400 | 30 | 45 | 75 | 3/3 | 13,3 | 7,3 | 3,3 | 1,3 |
Источник: выполнено М.А. Ярцевой, Л.А. Ивановой.
В вариантах с 5 % вермикулита наблюдается тенденция снижения содержания обменного азота относительно первой и третьей серий (без вермикулита и с 10 % вермикулита), снижается и токсичность почвосмесей. Содержание нитратного азота изменяется в узком интервале 45…55 мг N/кг, его концентрация в этом диапазоне не оказывает негативного влияния на растительные организмы. По суммарному содержанию подвижных форм азота отличие вариантов наиболее выражено: в опытах с 5% содержанием вермикулита N составляет не более 75 мг N/кг, а в двух других вариантах значение этого показателя не менее 75 мг N/кг.
Мочевина (NH2)2CO является наиболее концентрированным по азоту удобрением. В водной среде происходит гидролиз мочевины с образованием аммония, который на следующей стадии окисляется до нитрат-иона. Обе формы азота (аммонийный и нитратный) могут использоваться растениями в качестве источников питания. Вермикулит способен оказать влияние на скорость протекания процесса нитрификации аммония в результате проявления ионообменных свойств.
Выполненные эксперименты с высокой дозой внесения мочевины показали, что вермикулит снижает содержание обменного аммония в почвосмесях. Как показали результаты опыта с образцовой почвосмесью, снижение содержания обменного азота является результатом увеличения доли фиксированного (необменного) азота, а не следствием выноса азота с биомассой, поскольку биометрические показатели растений по вариантам эксперимента отличались незначительно.
Согласно [13], фиксация азота происходит при достижении порога концентрации аммония в растворе, выше которой часть ионов аммония закрепляется в решетке минерала. В серии с содержанием вермикулита 5 % при одинаковой концентрации аммония в растворе вероятность достижения такого порога увеличивается по сравнению с вариантами с 10 % вермикулита.
Обеспеченность почв азотом определяется преимущественно содержанием нитратного азота в доступной форме [14]. Узкий диапазон изменения содержания подвижного NO3– в почве как в первой серии экспериментов при низком содержании органического компонента (35…40 мг N/кг), так и во второй серии с высоким содержанием органики (45…55 мг N/кг) свидетельствует о том, что аммоний, фиксированный вермикулитом, обладает способностью постепенно окисляться с образованием нитратов, которые поступают в почвенный раствор и являются источником питания растений. По обеспеченности азотом почвосмеси с вермикулитом относятся к среднему уровню (30…50 мг N/кг [15]). Фиксированный аммоний медленнее по сравнению с обменной формой высвобождается в почвенный раствор, способствуя синхронизации процессов потребления азота растениями с наличием элементов питания в почве.
Заключение
Положительное влияние добавления вермикулита в состав почвосмесей выявлено в экспериментах, которые отличаются концентрацией азота, способом внесения удобрения, содержанием органического компонента в исходной почве. Показано, что высокое содержание обменного аммонийного азота оказывает токсическое действие на растения. Содержание нитратного азота во всех экспериментах изменялось в узком интервале значений, не влияя на токсичность почвы. Наиболее благоприятные почвенные условия создаются при внесении вермикулита в количестве 5 мас.% благодаря увеличению доли фиксированного аммония, который превращается в нитратную форму медленнее по сравнению с обменным аммонием.
1 ИСО 22030:2005. Качество почвы. Биологические методы. Хроническая токсичность высших растений.
2 ГОСТ 26483–85. Почвы. Приготовление солевой вытяжки и определение ее pH по методу ЦИНАО.
3 ГОСТ 26488–85. Почвы. Определение нитратов по методу ЦИНАО.
Об авторах
Ирина Петровна Кременецкая
Институт химии и технологии редких элементов и минерального сырьяим. И.В. Тананаева — обособленное подразделение федерального государственного
бюджетного учреждения науки ФИЦ Кольский научный центр РАН
Email: i.kremenetskaia@ksc.ru
ORCID iD: 0000-0003-3531-8273
SPIN-код: 7227-0180
старший научный сотрудник, Институт химии и технологии редких элементов и минерального сырья им. И.В. Тананаева — обособленное подразделение
Российская Федерация, 184209, г. Апатиты, мкрн. Академгородок, д. 26 аМарина Вячеславовна Слуковская
Институт химии и технологии редких элементов и минерального сырьяим. И.В. Тананаева — обособленное подразделение федерального государственного
бюджетного учреждения науки ФИЦ Кольский научный центр РАН; ФИЦ Кольский научный центр РАН; Российский университет дружбы народов
Автор, ответственный за переписку.
Email: m.slukovskaya@ksc.ru
ORCID iD: 0000-0002-5406-5569
SPIN-код: 8540-8055
старший научный сотрудник, лаборатория природоподобных технологий и техносферной безопасности Арктики, ФИЦ Кольский научный центр РАН; Институт химии и технологии редких элементов и минерального сырья им. И.В. Тананаева — обособленное подразделение федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра «Кольский научный центр» Российской академии наук
Российская Федерация, 184209, г. Апатиты, ул. Ферсмана, д. 14, Российская Федерация, 184209, г. Апатиты, мкрн. Академгородок, д. 26 аЛюбовь Андреевна Иванова
ФИЦ Кольский научный центр РАН; Полярно-альпийский ботанический сад-институт КНЦ РАН
Email: ivanova_la@inbox.ru
ORCID iD: 0000-0002-7994-5431
SPIN-код: 5752-3648
главный научный сотрудник, лаборатория декоративного цветоводства и озеленения, Полярно-альпийский ботанический сад-институт им. Н.А. Аврорина ; ведущий научный сотрудник, Институт проблем промышленной экологии Севера
Российская Федерация, 184209, г. Апатиты, мкрн. Академгородок, д. 18 аМария Александровна Ярцева
Полярно-альпийский ботанический сад-институт КНЦ РАН
Email: 468975@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-7560-6339
SPIN-код: 9820-0196
аспирант, ведущий инженер, лаборатория интродукции и акклиматизации растений, Полярно-альпийский ботанический сад-институт им. Н.А. Аврорина — обособленное подразделение
Российская Федерация, 184209, г. Апатиты, мкрн. Академгородок, д. 18 аТатьяна Константиновна Иванова
Институт химии и технологии редких элементов и минерального сырьяим. И.В. Тананаева — обособленное подразделение федерального государственного
бюджетного учреждения науки ФИЦ Кольский научный центр РАН; ФИЦ Кольский научный центр РАН
Email: tk.ivanova@ksc.ru
ORCID iD: 0000-0002-8103-2279
SPIN-код: 8752-2850
младший научный сотрудник, лаборатория природоподобных технологий и техносферной безопасности Арктики, ФИЦ Кольский научный центр РАН; Институт химии и технологии редких элементов и минерального сырья им. И.В. Тананаева — обособленное подразделение федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра «Кольский научный центр» Российской академии наук
Российская Федерация, 184209, г. Апатиты, ул. Ферсмана, д. 14; Российская Федерация, 184209, г. Апатиты, мкрн. Академгородок, д. 26 аСписок литературы
- Семенов В.М. Современные проблемы и перспективы агрохимии азота // Проблемы агрохимии и экологии. 2008. № 1. С. 55–63. EDN: JXDATP
- Башкин В.Н. Экологические риски применения азотных удобрений // Проблемы анализа риска. 2022. Т. 19. № 2. С. 40–53. doi: 10.32686/1812-5220-2022-19-2-40-53 EDN: JNDAFM
- Бузетти К.Д., Иванов М.В. Воздействие минеральных и органических удобрений на экосистему, качество сельскохозяйственной продукции и здоровье человека // Аграрная наука. 2020. № 5. С. 80–84. doi: 10.32634/0869-8155-2020-338-5-80-84 EDN: DQLGFZ
- Sharma L.K., Bali S.K. A Review of Methods to Improve Nitrogen Use Efficiency in Agriculture // Sustainability. 2018. Vol. 10. № 1. P. 51. https://doi.org/10.3390/su10010051
- Окорков В.В., Окоркова Л.А., Щукина В.И. Формирование урожая овса в зависимости от режима азотного питания растений на серых лесных почвах Владимирского ополья // Проблемы агрохимии и экологии. 2023. № 3. С. 4–16. doi: 10.26178/AE.2023.76.40.002 EDN: AYRCYI
- van Hees P.A.W., Jones D.L., Finlay R., Godbold D.L., Lundström U.S. The carbon we do not see — the impact of low molecular weight compounds on carbon dynamics and respiration in forest soils: a review // Soil Biology and Biochemistry. 2005. Vol. 37. № 1. P. 1–13. doi: 10.1016/j.soilbio.2004.06.010
- Liao J.D., Boutton T.W., Jastrow J.D. Storage and dynamics of carbon and nitrogen in soil physical fractions following woody plant invasion of grassland // Soil Biology and Biochemistry. 2006. Vol. 38. № 11. P. 3184–3196. doi: 10.1016/j.soilbio.2006.04.003
- Mazloomi F., Jalali M. Effects of vermiculite, nanoclay and zeolite on ammonium transport through saturated sandy loam soil: column experiments and modeling approaches // Catena. 2019. Vol. 176. Р. 170–180. doi: 10.1016/j.catena.2019.01.014 EDN: XZOOPJ
- Иванова Т.К., Мосендз И.А., Кременецкая И.П., Слуковская М.В., Максимова В.В., Красавцева Е.А. Получение азотсодержащих удобрений на основе серпентиновых минералов // Труды Ферсмановской научной сессии ГИ КНЦ РАН. 2023. № 20. С. 563–569. doi: 10.31241/FNS.2023.20.070 EDN: BNAUGR
- Нижегородов А.И. Электрические модульно-спусковые печи с системой рекуперации энергии для обжига вермикулитовых концентратов // Новые огнеупоры. 2015. № 10. С. 22–27. doi: 10.17073/
- 1683-4518-2015-10-22-27
- Звездин А.В., Нижегородов А.И. Оценка энергоэффективности подвесной нагревательной системы электрической печи для тепловой обработки сыпучих материалов // Вестник ИрГТУ. 2019. Т. 23. № 1. С. 41–53. doi: 10.21285/1814-3520-2019-1-41-53 EDN: VVBEDE
- Солдатова В.Ю., Шадрина Е.Г., Карпова С.Д. Биотестирование фитотоксичности почвогрунтов г. Якутска с использованием тест-объекта овса посевного Avena sativa L. // Природные ресурсы Арктики и Субарктики. 2018. Т. 24. № 2. С. 76–86. doi: 10.31242/2618-9712-2018-24-2-76-86 EDN: PREGEK
- Тырина Н.С. Исследование механизма и параметров сорбции аммония на юрских глинистых породах Московского региона // Геоэкология. Инженерия геология. Гидрогеология. Геокриология. 2009. № 2. С. 136–142. EDN: JWNQBN
- Гамзиков Г.П. Прогноз обеспеченности почв азотом и потребности полевых культур в азотных удобрениях // Инновации и продовольственная безопасность. 2015. № 3 (9). С. 11–20. EDN: VVCCXF
- Гамзиков Г.П. Принципы почвенной диагностики азотного питания полевых культур и применения азотных удобрений // Совершенствование методов почвенно-растительной диагностики азотного питания растений и технологий применения удобрений на их основе. М. : ВНИПТИХИМ, 2000. С. 33–55.
Дополнительные файлы
Источник: выполнено И.А. Мосендз, Т.К. Ивановой.
Источник: выполнено И.А. Мосендз, Т.К. Ивановой.












