Влияние низкой положительной температуры на формирование антиоксидантной системы световых и этиолированных проростков Amaranthus tricolor L., выращенных из семян, обработанных регуляторами роста
- Авторы: Гинс Е.М.1
-
Учреждения:
- Федеральный исследовательский центр картофеля им. А.Г. Лорха
- Выпуск: Том 18, № 4 (2023): Пестициды. Взгляд в будущее
- Страницы: 520-530
- Раздел: Растениеводство
- URL: https://agrojournal.rudn.ru/agronomy/article/view/19954
- DOI: https://doi.org/10.22363/2312-797X-2023-18-4-520-530
- EDN: https://elibrary.ru/LJLAEU
Цитировать
Полный текст
Аннотация
В Нечерноземной зоне России возвратные весенние холода до 1-2 °C могут вызвать повреждения и гибель проростков теплолюбивого растения - амаранта. Недорогим и эффективным методом для снижения негативного действия гипотермии на прорастание семян является предпосевная обработка семян регуляторами роста. Цель исследования - изучение влияния низкотемпературного стресса на этиолированные и световые проростки амаранта сорта Валентина ( A. tricolor L.), выращенные из семян, обработанных регуляторами роста. Для предпосевной обработки семян использовали водные растворы Альбита - 1 г/л, перекиси водорода (H2O2) - 5 мМ и янтарной кислоты (ЯК) - 500 мг/л. Семена проращивали в торфяных горшках при температурe 23 ± 2 °C (T23) в течение 7 суток. На 7-й день торфяные горшки с проростками, выращенными на свету и в темноте, перемещали в термостат при температуре 2,0 ± 0,5 °C (T2) на 8 часов. Определение количества амарантина, хлорофиллов и каротиноидов проводили по общепринятым методикам. Предпосевная обработка семян регуляторами роста Альбит, H2O2 и ЯК увеличивала длину гипокотиля, длину корня и биомассу световых и этиолированных проростков. Действие низких положительных температур повышало содержание амарантина и каротиноидов, однако, снижало содержание хлорофиллов. Показано, что все использованные регуляторы роста: H2O2, Альбит и ЯК - запускают либо поддерживают систему антиоксидантной защиты световых и этиолированных проростков амаранта сорта Валентина при действии низких положительных температур.
Полный текст
Введение
Низкие температуры относятся к основным абиотическим стрессам, которые значительно снижают урожайность и влияют практически на все функции растений, такие как фотосинтез, поглощение воды и питательных веществ, транспирацию и дыхание [1, 2].
Амарант (Amaranthus tricolor L.) — листовое овощное растение, содержащее биологически активные соединения с антиоксидантной активностью, включая аскорбиновую кислоту, амарантин, β-каротин, фенолы и флавоноиды [3]. В Нечерноземной зоне России возвратные весенние холода до 1–2 °C могут вызывать повреждения и гибель проростков теплолюбивого растения амаранта. Известно, что низкотемпературный стресс индуцирует накопление активных форм кислорода (АФК), таких как супероксидный радикал, перекись водорода, синглетный кислород и гидроксильные радикалы [4, 5]. Повреждения, вызванные АФК, и нарушение клеточного гомеостаза облегчаются действием различных антиоксидантов: ферментативных (каталазы, супероксиддисмутазы, пероксидазы, глутатионредуктазы, глутатионпероксидазы) и неферментативных (аскорбиновая кислота, каротиноиды, альфа-т окоферолы и глутатион) [4, 5]. Механизм образования АФК и их нейтрализация за счет низкомолекулярной антиоксидантной системы были связаны с устойчивостью растений к абиотическим стрессам [6].
Большое внимание уделяется разработке подходов к снижению негативного действия абиотических стрессов на прорастание семян. Недорогим и эффективным методом является предпосевная обработка семян регуляторами роста [7]. Предпосевная обработка семян — это индукция определенного физиологического состояния, в котором растения способны быстрее и лучше активировать защитные реакции, чтобы справиться с абиотическим стрессом [7, 8].
Реакция растений на абиотические стрессы, в т. ч. на низкие положительные температуры, является предметом различных исследований уже несколько десятилетий. Изучение реакции растений на стрессовые факторы необходимо для понимания адаптации растений при выращивании в условиях открытого грунта [9]. На данный момент в литературе нет достаточных данных о том, как реагирует антикосидантная система у проростков амаранта на низкие положительные температуры и какое значение имеет предпосевная обработка для практического использования.
Цель исследования — изучение влияния низкотемпературного стресса на световые и этиолированные проростки амаранта сорта Валентина (A. tricolor L.), выращенные из семян, обработанных регуляторами роста.
Материалы и методы исследования
Объектом исследования выбрали семена и проростки амаранта овощного типа Amaranthus tricolor L., сорта Валентина селекции ФГБНУ ФНЦО (Московская область).
Предпосевная обработка семян. Тщательно отбирались однородные и полные семена. Всего проводили 4 обработки семян: Альбит (1 г/л), перекись водорода (50 мМ/л), янтарная кислота (500 мг/л). В качестве контроля использовали дистиллированную воду. Семена замачивали в соответствующем водном растворе в течение 4 часов, затем их промывали дистиллированной водой, подсушивали и высевали в торфяные горшки. Часть горшков накрывали материалом, не пропускающим свет, и помещали в темную комнату. Эксперимент проводили в трех повторностях. Растения выращивали при температуре 23 ± 2 °C (T23). На 7-й день торфяные горшки с проростками, выращенными на свету и в темноте, перемещали в термостат при температуре 2,0 ± 0,5 °C (T2) на 8 часов (на ночь).
Биохимические показатели. Содержание фотосинтетических пигментов определяли спектрофотометрическим методом. Суммарное содержание хлорофиллов и каротиноидов рассчитывали по формулам [10]
где A470, A648,6 и A664,2 — поглощение на 470, 648,6 и 664,2 нм соответственно; V — объем экстрагента (этанола 96 %), мл; m — масса навески образца, г.
Количество амарантина в водных экстрактах определяли с учетом молярного коэффициента экстинкции 5,66·104 л·моль˗1·с˗1 и молярного веса 726,6 г·моль˗1 [11].
Анализ данных. Данные представлены как среднее из трех повторностей ± SD (стандартное отклонение) при уровне значимости P ≤ 0,05. Анализ данных выполняли в среде R [12].
Фотографии семядольных листьев и гипокотиля были сделаны с использованием инвертированного стереомикроскопа Stemi 508 с камерой Axiocam 305 color (Carl Zeiss Microscopy GmbH, Germany) при 5× увеличении.
Результаты исследования и обсуждение
Влияние предпосевной обработки на морфометрические показатели проростков. Исследование выявило, что предпосевная обработка семян амаранта регуляторами роста растений улучшала морфометрические показатели проростков амаранта, выращенных в условиях света и темноты (табл. 1).
Таблица 1. Морфометрические показатели проростков амаранта сорта Валентина, выращенных из семян, обработанных регуляторами роста в условиях света и темноты
Обработка семян | В условиях света | В условиях темноты | ||||
Длина гипокотиля, см | Длина корня, см | Масса 10 проростков, г | Длина гипокотиля, см | Длина корня, см | Масса 10 проростков, г | |
H2O (контроль) | 2,53 ± 0,18 | 2,28 ± 0,32 | 0,0780 ± 0,0022 | 6,12 ± 0,21 | 2,10 ± 0,43 | 0,1003 ± 0,0070 |
Альбит | 3,28 ± 0,21 | 3,53 ± 0,35 | 0,0890 ± 0,0027 | 7,10 ± 0,14 | 2,62 ± 0,38 | 0,1120 ± 0,0075 |
Янтарная кислота | 2,78 ± 0,084 | 4,01 ± 0,27 | 0,0787 ± 0,0020 | 6,20 ± 0,15 | 3,28 ± 0,40 | 0,1033 ± 0,0043 |
H2O2 | 2,87 ± 0,094 | 3,42 ± 0,25 | 0,0790 ± 0,0013 | 5,82 ± 0,10 | 2,99 ± 0,38 | 0,1005 ± 0,0038 |
Обработка семян регуляторами роста: Альбит, H2O2 и янтарная кислота (ЯК) — увеличивала длину гипокотиля у проростков, выращенных на свету, на 28,64, 13,44 и 9,88 %, длину корня — на 54,82, 50 и 75,88 %, а биомассу проростков — на 14,10, 1,28 и 0,9 % соответственно.
В условиях темноты обработка семян препаратами Альбит и ЯК также эффективно воздействовала на морфометрические показатели и увеличивала длину гипокотиля на 16,01 и 1,31 % по сравнению с контролем, длину корня — на 24,78 и 56,19 %, а массу проростков — на 11,67 и 2,99 % соответственно. В то же время обработка H2O2 снижала длину гипокотиля на 4,9 % по сравнению с контролем.
Примечательно, что в условиях темноты длина гипокотиля в контрольных образцах проростков амаранта была на 141,9 % больше, чем в контрольных образцах, выращенных в условиях света.
В нашем исследовании у этиолированных проростков амаранта сорта Валентина образовывались длинный гипокотиль и желто- розовые семядольные листья, которые при визуальной оценке не раскрывались и были меньше, чем листья проростков, выращенных на свету (рис. 1, 2).
Рис. 1. Семядольный лист 7‑суточного проростка амаранта сорта Валентина, выращенного в условиях света (а) и в темноте (б)
Источник: выполнено автором
Рис. 2. Гипокотиль 7‑суточного проростка амаранта сорта Валентина, выращенного в условиях света (а) и в темноте (б)
Источник: выполнено автором
Влияние низкой положительной температуры на содержание амарантина и фотосинтетических пигментов в световых и этиолированных проростках. Выявлено повышение содержания амарантина при действии низкой положительной температуры во всех проростках, выращенных в условиях света и темноты. При этом наблюдали разный уровень накопления амарантина при действии гипотермии в зависимости от вида регулятора роста (табл. 2).
Таблица 2. Содержание амарантина, мг/г сырой массы, в световых и этиолированных проростках амаранта сорта Валентина, обработанных регуляторами роста при действии низкой положительной температуры 2 °C
Обработка семян | В условиях света | В условиях темноты | ||
T23 | T2 | T23 | T2 | |
H2O (контроль) | 0,385 ± 0,014 | 0,395 ± 0,010 | 0,066 ± 0,003 | 0,118 ± 0,005 |
Альбит | 0,340 ± 0,008 | 0,519 ± 0,008 | 0,058 ± 0,003 | 0,130 ± 0,005 |
Янтарная кислота | 0,380 ± 0,012 | 0,406 ± 0,09 | 0,093 ± 0,002 | 0,136 ± 0,006 |
H2O2 | 0,400 ± 0,011 | 0,480 ± 0,008 | 0,079 ± 0,004 | 0,140 ± 0,006 |
В световых проростках действие гипотермии повышало содержание амарантина в контроле, а также в проростках, выращенных из семян, обработанных ЯК, H2O2 и Альбитом на 2,6; 6,84; 20 и 52,65 %, а в этиолированных проростках — на 78,79; 46,24; 77,22 и 124,14 % соответственно. При этом в контрольных вариантах у этиолированных проростков содержание амарантина было ниже на 82,86 %, чем в световых проростках.
Известно, что именно бетацианины являются фотозащитными соединениями, тесно связанными с холодовым стрессом [13]. Повышение биосинтеза амарантина в условиях гипотермии позволяет предположить, что данный пигмент играет важную роль в устойчивости проростков к холодовому стрессу.
В этиолированных проростках обнаружено следовое содержание суммы хлорофиллов а + б, поэтому представлено только суммарное содержание хлорофиллов в световых проростках. Действие низкотемпературного стресса снизило суммарное содержание хлорофиллов а и б в световых проростках, в контроле и при обработке ЯК — на 9,84 и 3,13 % соответственно (табл. 3).
Таблица 3. Суммарное содержание хлорофиллов а+б в световых проростках амаранта сорта Валентина, обработанных регуляторами роста при действии низкой положительной температуры 2 °C
Обработка семян | Хлорофиллы а+б, мг/г сырой массы | |
T23 | T2 | |
H2O (контроль) | 0,315+0,007 | 0,284 ± 0,005 |
Альбит | 0,267 ± 0,005 | 0,325 ± 0,006 |
Янтарная кислота | 0,320 ± 0,012 | 0,310 ± 0,0010 |
H2O2 | 0,321 ± 0,011 | 0,337 ± 0,009 |
Возможно, снижение содержания хлорофиллов в условиях низкотемпературного стресса частично связано с нарушением биосинтеза протохлорофилидов или с ингибированием биосинтеза 5-аминолевулиновой кислоты [14]. Известно, что низкотемпературный стресс вызывает окисление липидов в мембране, что приводит к образованию АФК, в основном в пластидах. Впоследствии АФК окисляют фотосинтетический пигмент, снижая содержание хлорофилла [15].
Однако в проростках, семена которых были обработаны H2O2 и Альбитом, обнаружили повышение суммарного содержания хлорофиллов на 4,98 и 21,71 % соответственно (см. табл. 3). По-видимому, степень устойчивости хлорофиллов в проростках к действию гипотермии может определяться концентрацией и видом регулятора роста. Так низкая концентрация экзогенной H2O2 регулирует физиологические процессы, включая фотосинтез, повышая устойчивость фотосинтетических пигментов, в т. ч. каротиноидов [16].
В хлоропластах каротиноиды выполняют функцию вспомогательных светособирающих пигментов, направляющих избыточную энергию от хлорофиллов на защиту от фотоокислительных повреждений [17].
В наших опытах на световых проростках были получены неоднозначные данные. В условиях гипотермии содержание каротиноидов снизилось в световых проростках, семена которых были обработаны ЯК, на 11,11 %, а в контроле — на 13,76 %, в то время как у семян, обработанных H2O2 и Альбитом, в проростках повысилось количество пигмента на 5,41 и 19,33 % соответственно (табл. 4).
Таблица 4. Суммарное содержание каротиноидов, мг/г сырой массы, в световых и этиолированных проростках амаранта сорта Валентина, обработанных регуляторами роста при действии низкой положительной температуры 2 °C
Обработка семян | В условиях света | В условиях темноты | ||
T23 | T2 | T23 | T2 | |
H2O (контроль) | 0,138 ± 0,004 | 0,119 ± 0,003 | 0,024 ± 0,002 | 0,041 ± 0,001 |
Альбит | 0,119 ± 0,002 | 0,142 ± 0,005 | 0,022 ± 0,001 | 0,049 ± 0,002 |
Янтарная кислота | 0,135 ± 0,007 | 0,120 ± 0,004 | 0,029 ± 0,003 | 0,043 ± 0,005 |
H2O2 | 0,148 ± 0,003 | 0,156 ± 0,004 | 0,031 ± 0,004 | 0,043 ± 0,001 |
При этом в этиолированных проростках при действии низких положительных температур содержание каротиноидов увеличивалось при всех обработках семян: в контроле на 70,83 %, при обработках Альбитом на 122,73 %, ЯК — на 48,28 %, H2O2 — на 38,71 %. Отмечено, что в этиолированных проростках накапливается значительно меньшее количество каротиноидов по сравнению со световыми проростками как при оптимальной, так и низкой температуре. Возможно, это связано с тем, что биосинтез каротиноидов в этиолированных проростках ограничивается наличием метаболических предшественников [18].
При действии света в условиях оптимальной температуры нами выявлена сильная активация биосинтеза каротиноидов во всех видах обработки. По-видимому, этиопластные каротиноиды способствуют адаптации этиолированных проростков к свету. При этом регулирование образования каротиноидов в темноте может позволить этиолированным сеянцам оптимизировать переход к фотосинтезу после освещения. Следовательно, процесс деэтиоляции проростков амаранта, индуцируемый светом, включает образование высоких уровней каротиноидов, хлорофиллов и амарантина для поддержания фотосинтетических и защитных реакций.
В условиях гипотермии увеличение содержания суммы хлорофиллов, а также каротиноидов в проростках амаранта, выращенных из семян при обработке H2O2 и Альбитом, свидетельствует о повышении устойчивости фотосинтетических пигментов и, следовательно, фотосинтетического аппарата.
Влияние низкой положительной температуры на содержание антиоксиданта амарантина и фотосинтетических пигментов в семядольных листьях световых проростков, выращенных из семян, обработанных регуляторами роста. При изучении накопления амарантина в семядольных листьях световых проростков в ответ на действие низкотемпературного стресса было выявлено, что содержание амарантина увеличивалось, но его количество зависело от варианта обработки. Так, в контроле и при обработке семян H2O2, ЯК и Альбитом содержание амарантина под действием гипотермии увеличивалось на 12,46; 35; 41,29 и 44,41 % соответственно (табл. 5).
Таблица 5. Содержание амарантина и фотосинтетических пигментов: хлорофиллов и каротиноидов — в семядольных листьях световых проростков, обработанных регуляторами роста при действии низкой положительной температуры 2 °C
Обработка семян | Амарантин, мг/г сырой массы | Хлорофиллы, мг/г сырой массы | Каротиноиды, мг/г сырой массы | |||
T23 | T2 | T23 | T2 | T23 | T2 | |
H2O (Контроль) | 0,610 ± 0,010 | 0,686 ± 0,009 | 0,667 ± 0,009 | 0,657 ± 0,012 | 0,266 ± 0,009 | 0,276 ± 0,007 |
Альбит | 0,599 ± 0,009 | 0,865 ± 0,014 | 0,708 ± 0,012 | 0,750 ± 0,014 | 0,290 ± 0,010 | 0,314 ± 0,006 |
Янтарная кислота | 0,603 ± 0,012 | 0,852 ± 0,009 | 0,693 ± 0,010 | 0,760 ± 0,010 | 0,278 ± 0,005 | 0,321 ± 0,007 |
H2O2 | 0,618 ± 0,014 | 0,838 ± 0,010 | 0,693 ± 0,009 | 0,777 ± 0,007 | 0,283 ± 0,008 | 0,335 ± 0,009 |
Амарантин — пигмент, необходимый для гомеостаза в условиях абиотического стресса. Значительное накопление бетацианина аккумулируется в верхнем и нижнем эпидермисе, в палисадных и губчатых клетках мезофилла, а также и замыкающих клетках устьиц [19].
Содержание хлорофиллов в условиях низкой положительной температуры снизилось только в семядольных листьях контрольных проростков на 1,5 %, а обработка семян Альбитом, ЯК и H2O2 повысила содержание хлорофиллов в проростках на 5,93; 9,67 и 12,12 %.
Wittayathanarattana Т. и др. пришли к выводу, что действие кратковременного положительного низкотемпературного стресса на корневую систему амаранта ограничивает фотосинтез, что приводит к истощению ресурсов растений в тканях и заставляет их сохранять критически важные питательные вещества для выживания. Хлорофилл может быть менее необходим в условиях ограниченных ресурсов и избытка АФК по сравнению с амарантином и каротиноидами [15].
Каротиноиды представляют собой пигменты, накапливающиеся в хлоропластах и имеющие решающее значение для фотозащиты, улавливания света и стабилизации фотосинтетической активности [20], и обладают высокой антиоксидантной способностью, удаляя синглетный кислород и пероксильные радикалы [21].
При действии гипотермии наблюдали повышение уровня каротиноидов во всех вариантах обработки: в контроле на 3,76, при обработке семян Альбитом на 8,27, ЯК на 15,47 и H2O2 на 18,37 %.
В условиях низкой положительной температуры в семядольных листьях существенно увеличивается количество антиоксиданта — амарантина и каротиноидов в проростках всех образцов, обработанных Альбитом, H2O2 и ЯК. Следовательно, все использованные регуляторы роста запускают или, по крайней мере, поддерживают систему антиоксидантной защиты в световых и этиолированных проростках амаранта сорта Валентина при действии низких положительных температур.
Заключение
Предпосевная обработка семян амаранта регуляторами роста не только повышает качество семян, но и изменяет — повышает или снижает антиоксидантную способность проростков, а также ростовые процессы по сравнению с контролем. Низкая положительная температура индуцирует синтез амарантина в световых и этиолированных проростках при всех видах обработки семян регуляторами роста, тогда как синтез каротиноидов повышается в световых проростках только при обработке семян H2O2 и Альбитом, а в этилированных проростках — при обработке Альбитом, ЯК и H2O2.
По литературным данным и полученным нами результатам исследования можно предположить, что в условиях гипотермии индуцируется избыток молекул АФК в клетке, которые проявляют как свойства токсичных продуктов метаболизма, так и сигнальных молекул, вовлекаясь в процессы, приводящие к повышению устойчивости проростков к стрессу. Устойчивость проростков амаранта проявляется в количестве индуцированных молекул амарантина, образовавшихся после действия низкотемпературного стресса. Уровень повышения содержания амарантина в семядольных листьях после стрессового действия низкой температуры может указывать на разную способность проростков, индуцировать максимальное для данной обработки количество антиоксидантов. По сравнению с контролем система синтеза амарантина придает большую устойчивость проросткам к действию гипотермии, семена которых были обработаны регуляторами роста.
Об авторах
Екатерина Муратовна Гинс
Федеральный исследовательский центр картофеля им. А.Г. Лорха
Автор, ответственный за переписку.
Email: katya.888888@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-5685-6305
младший научный сотрудник
Российская Федерация, 140051, Московская область, Люберецкий район, п. Красково, ул. Лорха, д. 23, литера «В»Список литературы
- Sanghera GS, Wani SH, Hussain W, Singh NB. Engineering cold stress tolerance in crop plants. Current Genomics. 2011;12(1)30-43. doi: 10.2174/138920211794520178
- Park AR, Kim J, Kim B, Ha A, Son JY, Song CW, et al. Exogenous Bio-B ased 2,3-Butanediols Enhanced Abiotic Stress Tolerance of Tomato and Turfgrass under Drought or Chilling Stress. J Microbiol Biotechnol. 2022;32(5):582-593. doi: 10.4014/jmb.2201.01025
- Sarker U, Hossain MN, Iqbal MA, Oba S. Bioactive components and radical scavenging activity in selected advance lines of salt-tolerant vegetable amaranth. Front Nutr. 2020;7:587257. doi: 10.3389/fnut.2020.587257
- Hussain HA, Hussain S, Khaliq A, Ashraf U, Anjum SA, Men S, et al. Chilling and drought stresses in crop plants: implications, cross talk, and potential management opportunities. Front Plant Sci. 2018;9:393; doi: 10.3389/fpls.2018.00393
- Mittler R. Oxidative stress, antioxidants and stress tolerance. Trend Plant Sci. 2002;7(9):405-410. doi: 10.1016/S1360-1385(02)02312-9
- Gill SS, Tuteja N. Reactive oxygen species and antioxidant machinery in abiotic stress tolerance in crop plants. Plant Physiol Biochem. 2010;48(12):909-930. doi: 10.1016/j.plaphy.2010.08.016
- Rhaman MS, Imran S, Rauf F, Khatun M, Baskin CC, Murata Y, et al. Seed priming with phytohormones: an effective approach for the mitigation of abiotic stress. Plants. 2021;10(1):37. doi: 10.3390/plants10010037
- Jisha KC, Vijayakumari K, Puthur JT. Seed priming for abiotic stress tolerance: an overview. Acta Physiol Plant. 2013;35:1381-1396. doi: 10.1007/s11738-012-1186-5
- Pandey P, Ramegowda V, Senthil-K umar M. Shared and unique responses of plants to multiple individual stresses and stress combinations: physiological and molecular mechanisms. Front Plant Sci. 2015;6:723. doi: 10.3389/fpls.2015.00723
- Lichtenthaler HK. Chlorophylls and carotenoids - pigments of photosynthetic biomembranes. Methods in Enzymology. 1987;148:350-382. doi: 10.1016/0076-6879(87)48036-1
- Gins MS, Gins VK, Kononkov PF. Change in the biochemical composition of amaranth leaves during selection for increased amaranthine content. Applied Biochemistry and Microbiology. 2002;38(5):474-479. doi: 10.1023/A:1019980821313
- Fox J, Leanage A. R and the Journal of Statistical Software. J Stat Softw. 2016;73(2):1-13. doi: 10.18637/jss.v073.i02
- Li S, Jiang H, Wang J, Wang Y, Pan S, Tian H, et al. Responses of plant growth, physiological, gas exchange parameters of super and non-super rice to rhizosphere temperature at the tillering stage. Sci Rep. 2019;9(1):10618. doi: 10.1038/s41598-019-47031-9
- Tewari AK, Tripathy BC. Temperature-stress-induced impairment of chlorophyll biosynthetic reactions in cucumber and wheat. Plant Physiol. 1998;117(3):851-858. doi: 10.1104/pp.117.3.851
- Wittayathanarattana T, Wanichananan P, Supaibulwatana K, Goto E. A short-term cooling of root-zone temperature increases bioactive compounds in baby leaf Amaranthus tricolor L. Front Plant Sci. 2022;13:944716. doi: 10.3389/fpls.2022.944716
- Deng XP, Cheng YJ, Wu XB, Kwak SS, Chen W, Eneji AE. Exogenous hydrogen peroxide positively influences root growth and metabolism in leaves of sweet potato seedlings. Aust J Crop Sci. 2012;6(11):1572-1578.
- Baroli I, Niyogi KK. Molecular genetics of xanthophyll-dependentphotoprotection in green algae and plants. Philos Trans R Soc Lond. BBiol Sci. 2000;355(1402):1385-1394. doi: 10.1098/rstb.2000.0700
- Rodriéguez-C oncepcioén M, Foreés O, Martiénez-Garciéa JF, Gonzaélez V, Phillips MA, Ferrer A, et al. Distinct light-m ediated pathways regulate the biosynthesis and exchange of isoprenoid precursors during Arabidopsis seedling development. The Plant Cell. 2004;16(1):144-156. doi: 10.1105/tpc.016204
- Nakashima T, Araki T, Ueno O. Photoprotective function of foliar betacyanin in leaves of Amaranthus Cruentus under drought stress. In: Photosynthesis Research for Food, Fuel and the Future: 15th International Conference on Photosynthesis. Berlin, Heidelberg: Springer; 2013. p.485-488. doi: 10.1007/978-3-642-3203 4-7_102
- Stanley L, Yuan YW. Transcriptional regulation of carotenoid biosynthesis in plants: so many regulators, so little consensus. Front Plant Sci. 2019;10:1017. doi: 10.3389/fpls.2019.01017
- Stahl W, Sies H. Antioxidant activity of carotenoids. Mol Asp Med. 2003;24(6):345-351. doi: 10.1016/S0098-2997(03)00030-X