Влияние термовермикулита на рост и развитие овощных культур на ювенильном этапе онтогенеза

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Представлены результаты экспериментов по использованию вспученного вермикулита для проращивания семян пяти видов овощных культур, перспективных для выращивания в условиях Кольской Субарктики: свекла столовая (Beta vulgaris L.), капуста белокочанная (Brassica oleracea L.), капуста цветная (Brassica oleracea L. var. botrytis L.), капуста пекинская (Brassica rapa L. Chinese Cabbage Group), салат кочанный (Lactuca sativa L.). Использованы два вида субстратов из вермикулита Ковдорского месторождения, отличающихся по условиям обжига, в качестве контроля — агропочва. Показатели роста и развития растений на ювенильном этапе онтогенеза статистически значимо (р < 0,005) отличались для трех вариантов эксперимента. Лучшие результаты получены в вариантах с применением вермикулитовых субстратов, которые способствовали более интенсивному, по сравнению с почвой, прорастанию семян, росту надземной части и корней сеянцев всех пяти овощных культур. Достоверные отличия в накоплении проростками зеленой биомассы были отмечены только в опыте со свеклой столовой. У других четырех видов разница в массе сеянцев была несущественной. Термовермикулит марки ТВ2-Н, полученный обжигом в инновационной печи конструкции А.И. Нижегородова, оказал более выраженное по сравнению с термовермикулитом марки Випон-2 положительное влияние на прорастание семян, рост сеянцев и длину корневой системы проростков изученных видов овощных культур. Субстрат ТВ2-Н рекомендован для применения в растениеводстве при проращивании семян овощных культур.

Полный текст

Введение

Жизненный цикл (онтогенез) растений условно можно разделить на несколько этапов. Каждый из них имеет свои отличительные особенности развития и роста структурных элементов организма, которые имеют отношение к их целевому предназначению. У двудольных цветковых растений предгенеративный период включает эмбриональный, ювенильный и виргинильный этапы онтогенеза [1]. В свою очередь ювенильный этап состоит из прорастания зародыша и включает три последовательные фазы: физическую (семена поглощают воду и набухают), биохимическую (превращение нерастворимых запасных веществ в растворимые) и морфологическую (начало роста зародыша) (рис. 1) [2]. Ювенильный этап является этапом доминирования ростовых процессов вегетативных органов — семя прорастает, образуется корневая система, растут стебель и листья. Как правило, процесс прорастания семени может длиться от трех до семи дней, после чего растение входит в стадию роста рассады, которая обычно длится в течение одного месяца.

Рис. 1. Последовательность процессов прорастания сухих семян цветковых двудольных растений: 1 — покой; 2 — набухание; 3 — наклевывание; 4 — рост первичных корешков;
5 — развитие ростка; 6 — становление ростка
Источник: фото М.А. Ярцевой
Fig. 1. Sequence of germination processes in dry seeds of dicotyledonous plants: 1 — dormancy; 2 — swelling; 3 — chitting; 4 — growth of primary roots; 5 — sprout development; 6 — sprout establishment
Source: photo by Maria A. Yartseva

Изучение роста и развития проростков семян — один из наиболее перспективных путей выявления потенциальных и адаптивных возможностей видов и может служить основой направленного отбора более устойчивых особей, что очень важно для успешного культивирования растений [3].

Выращивание здоровых и продуктивных растений из семени сложно, поскольку скорость обмена веществ и направленность процессов, происходящих в прорастающих семенах, во многом зависят не только от их состава и физиологического состояния, но и в значительной степени от обеспеченности влагой и кислородом, наличия подходящего для конкретного вида растений температурного и светового режима. Только в таких условиях жизнеспособное семя выходит из состояния анабиоза и зародыш начинает свое развитие [4]. Процесс роста зародыша из семян у большинства видов растений начинается при содержании воды в среде прорастания на уровне 20…40 % (исключение составляют семена с повышенным содержанием белка, прорастающие при более высоком уровне влажности — 50…60 %). Однако для дальнейшего полного формирования проростков требуется еще большая влажность среды — 85…95 % [5, 6].

В качестве благоприятной среды для прорастания семян, обеспечивающей надлежащую влажность и наличие кислорода, могут служить воздухо- и влагоемкие субстраты-­почвозаменители (перлит, термовермикулит, гидрогель, торф, сфагновый мох, опилки и др.). Из них наиболее перспективным общепризнан термовермикулит [7]. Он представляет собой гофрированные гранулы («гармошки»), состоящие из вспученных при обжиге пластинок минерала вермикулита [8] (рис. 2).

Рис. 2. Вспученные гофрированные гранулы термовермикулита
Источник: фото М.А. Ярцевой
Fig. 2. Expanded corrugated granules of thermovermiculite
Source: photo by Maria A. Yartseva

В Мурманской области, близ г. Ковдор, было открыто одно из богатейших в мире месторождений вермикулита [9]. Начиная с 1963 г. сотрудниками Кольского научного центра РАН проводятся научные исследования по созданию технологий эффективного применения ковдорского вермикулита в растениеводстве, в частности, для гидропонного культивирования одно- и многолетних культур защищенного грунта [10], выращивания травяной ковровой дернины (открытый грунт) [11], рассады овощных и декоративно-­цветочных культур [12], в т. ч. для посева семян разных видов культурных растений [13]. Первоначально на предприятии «Ковдорслюда» выпускался крупнофракционированный золотисто-­коричневый вермикулитовый наполнитель, затем несколько модификаций субстратов марки «Верпон» и «УВС». В 2004 г. была разработана усовершенствованная электрическая печь, на которой получали вермикулитовый субстрат пяти модификаций «Випон» [14–16].

Задача по повышению эффективности тепловых агрегатов для обжига вермикулита успешно решена в конструкции электрической модульно-­спусковой печи, разработанной под руководством д-ра техн. наук А.И. Нижегородова, заведующего кафедрой строительных, дорожных машин и гидравлических систем Иркутского национального исследовательского технического университета.

Экземпляр печи для выполнения исследований по тематике ИХТРЭМС КНЦ РАН изготовлен в ООО «Центр экспериментальной отработки инноваций» (директор А.В. Звездин). Электрическая модульно-­спусковая печь (ЭМСП) предназначена для непрерывной высокотемпературной обработки вермикулита и сунгулита или их конгломератов [17]. По энергоэффективности ЭМСП превосходят традиционные огневые печи, работающие на углеводородном топливе [18].

Особенностью модульно-­спусковой печи является использование электрической энергии для термической обработки сыпучих минералов. В пространстве обжига наклонных электрических модулей, на специальных токопроводящих головках продольно потоку сыпучей среды установлены электрические нагреватели, выполненные из полосового нихрома. Пространства между соседними полосами образуют тепловые камеры, в которых создается локализованное тепловое поле, воздействующее непосредственно на сыпучую среду, движущуюся вдоль камер. Термокрышки модулей, расположенные над нагревателями, замыкают пространство обжига.

Благодаря локализации теплового излучения, направленного непосредственно на обрабатываемый материал, удельная энергоемкость процесса обжига вермикулита в таких печах составляет 155…170 КДж/м3, тогда как в огневых печах, работающих на углеводородном топливе, она не опускается ниже 210…230 КДж/м3 [17].

Исследовано влияние температуры обжига на свой­ства термовермикулита, полученного в печи конструкции А.И. Нижегородова (вермикулит маркирован как ТВ-Н). Установлено, что оптимальными условиями обжига является температура 500 °С [18].

Свой­ства полученного вермикулита сравнили с характеристиками промышленного образца — вспученного вермикулита марки ВИПОН (производитель — ООО «Випон»). При определении режимов обжига субстратов марки Випон стремились к максимальному вспучиванию, которое сочеталось бы со слабой структурой минерала и высокой прочностью суспензионного раствора, а также высоким рН воды [16].

В нашем исследовании вермикулит марки ВИПОН представлен в качестве эталонного субстрата. Вермикулит, полученный с использованием печи конструкции А.И. Нижегородова (маркировка ТВ2-Н), исследован с точки зрения его применения в агротехнологиях.

Цель исследования заключается в сравнительной оценке влияния разных типов субстратов на рост и развитие пяти видов овощных культур на ювенильном этапе онтогенеза.

Материалы и методы исследования

Объекты исследования — три субстрата и пять овощных культур (табл. 1). При выборе культур предпочтение отдавалось наиболее популярным у населения овощным растениям, сорта которых включены в Госреестр по Мурманской области и рекомендованы для выращивания в условиях Кольского Заполярья.

Таблица 1. Характеристики овощных культур

№ 
опыта

Культура

Вид

Сорт

Репродукция семян

Всхожесть,%

1

Свекла
столовая

Beta vulgaris L.

΄Бордо 237΄

Фирма «Гавриш»

88

2

Капуста
белокочанная

Brassica oleracea L.

΄Номер первый Полярный к 206΄

ВИР

(Полярная опытная станция)

70

3

Капуста
цветная

Brassica oleracea L. var.

Botrytis L.

΄Сноуболл 123΄

Фирма «Гавриш»

62

4

Капуста
пекинская

Brassica rapa L. Chinese Cabbage Group

΄Хибинская΄

ВИР

(Полярная опытная станция)

100

5

Салат
кочанный

Lactuca sativa L.

΄Кучерявец
одесский΄

Фирма «Гавриш»

80

Table 1. Characteristics of vegetable crops

Experiment

Crop

Species

Cultivar

Seed reproduction

Germination,%

1

Beetroot

Beta vulgaris L.

΄Bordo 237΄

“Gavrish” company

88

2

Cabbage

Brassica oleracea L.

΄Nomer pervyy Polyarnyy k 206΄

Vavilov Institute of Plant Industry (Polar experimental station)

70

3

Cauliflower

Brassica oleracea L. var.

botrytis L.

΄Snowball 123΄

“Gavrish” company

62

4

Chinese cabbage

Brassica rapa L. Chinese Cabbage Group

΄Khibinskaya΄

Vavilov Institute of Plant Industry (Polar experimental station)

100

5

Lettuce

Lactuca sativa L.

΄Kucheryavets odesskiy΄

“Gavrish” company

80

Характеристика субстратов. Мелкофракционированный термовермикулит марки Випон-2 использован как эталонный материал, уже прошедший испытание в растениеводстве и рекомендованный в качестве универсального субстрата для посева семян, укоренения черенков, выращивания рассады и зеленных культур. Этот искусственный субстрат обладает рядом превосходных свой­ств, которые отличают его от других. Особенно важны при посеве и проращивании семян его высокая влагоемкость и влагоудерживающая способность, легкость, буферность, стерильность и воздухопроницаемость [19].

Мелкофракционированный термовермикулит марки ТВ2-Н, как и более ранние и известные типы термовермикулитов, получен из ковдорского вермикулитового концентрата. Однако его обжиг был произведен в другом тепловом агрегате — инновационной ЭМСП, разработанной на базе ООО «Квалитет» (г. Иркутск) сотрудником Национального исследовательского Иркутского государственного технического университета А.И. Нижегородовым [17], поэтому характеризуется другими физико-­химическими свой­ствами [20].

По сравнению с вермикулитом марки Випон-2 у вспученного вермикулита, полученного на ЭМСП, меньшая насыпная плотность и он является более щелочным, удерживающим меньшее количество влаги, впервые проходит испытание в растениеводстве с точки зрения возможности его применения в агротехнологиях (табл. 2).

Таблица 2. Характеристики субстратов

Субстрат

Показатель

Размер частиц, мм

Насыпная
плотность, г/дм³

Влагоемкость, мас.%

pH (Н2О)

pH (KCI)

Eh, mV

ТВ2-Н

0,45…2,0

300…350

100

9,2

7,4

114

Випон-2

0,45…2,0

400…500

180

8,8

7,1

176

Почва

2,0…2,5

300…400

42,7

6,4

6,1

200

Table 2. Growing medium characteristics

Growing medium

Indicator

Particle size, mm

Bulk density, g/dm³

Moisture capacity, %

pH (Н2О)

pH (KCI)

Eh, mV

TV2-H thermovermiculite

0.45…2.0

300…350

100

9.2

7.4

114

Vipon-2 thermovermiculite

0.45…2.0

400…500

180

8.8

7.1

176

Soil

2.0…2.5

300…400

42.7

6.4

6.1

200

Садовая земля (далее по тексту почва) — почвосмесь, приготовленная из дерновой, перегнойно-­навозной, компостной, торфяной, листовой, огородной и хвой­ной земель, а также крупнозернистого речного песка, взятых в соотношениях 1:1:1:1:1:1:0.3:0.5 (по объему), и небольшого количества древесного угля. Этот состав рекомендуется использовать в тепличных и оранжерейных хозяйствах, а также в парниках и теплицах для таких задач, как посев семян, укоренение черенков, выращивание рассады и зеленых культур, а также культивирование различных цветочных, декоративных и овощных растений [21].

Эксперименты проводили весной 2022 г. на базе Полярной опытной станции филиала Всероссийского института генетических ресурсов растений имени Н.И. Вавилова (ВИР) и Кольского научного центра Российской академии наук (ФИЦ КНЦ РАН).

Проведено пять лабораторных опытов (по количеству видов овощных культур) длительностью 10 дней каждый. Схема каждого эксперимента включала выращивание культуры на трех вариантах субстратов (табл. 3), выполненное в пяти повторностях.

Таблица 3. Схема опытов

№ опыта

Культура

№ варианта

Субстрат

Количество повторностей n

1

Свекла столовая

1

ТВ2-Н

5

2

Випон-2

5

3

Почва

5

2

Капуста белокочанная

1

ТВ2-Н

5

2

Випон-2

5

3

Почва

5

3

Капуста цветная

1

ТВ2-Н

5

2

Випон-2

5

3

Почва

5

4

Капуста пекинская

1

ТВ2-Н

5

2

Випон-2

5

3

Почва

5

5

Салат кочанный

1

ТВ2-Н

5

2

Випон-2

5

3

Почва

5

Table 3. Experimental design

Experiment

Crop

Variant

Growing medium

Number of replications n

1

Beetroot

1

ТV2-H

5

2

Vipon-2

5

3

Soil

5

2

Cabbage

1

ТV2-H

5

2

Vipon-2

5

3

Soil

5

3

Cauliflower

1

ТV2-H

5

2

Vipon-2

5

3

Soil

5

4

Chinese cabbage

1

ТV2-H

5

2

Vipon-2

5

3

Soil

5

5

Lettuce

1

ТV2-H

5

2

Vipon-2

5

3

Soil

5

Субстрат объемом 250 мл помещали в пластиковые контейнеры размером 10×10×6 см и увлажняли 125 мл воды. Затем проводили прямой посев семян в субстрат с их заделкой на глубину 0,5 см и последующим орошением водой в количестве 50 мл. Посевы закрывали пленкой для сохранения влажности. После появления первых всходов пленку удаляли.

Перед посевом определяли всхожесть семян согласно ГОСТ 12038–84 с использованием фильтровальной бумаги [22] (см. табл. 1). Полученный результат учитывали при расчете нормы высева семян. Таким образом, количество высеянных семян на одну емкость составило: для свеклы столовой — 114, капусты белокочанной — 143, капусты цветной — 161, капусты пекинской — 100, салата кочанного — 125 шт.

В экспериментах проводили наблюдения за динамикой прорастания семян каждой из культур, фиксируя появление первых и массовых всходов. К непроросшим относили набухшие, но не развившиеся, а также проросшие семена с недоразвившимися зелеными семядолями. Учет проросших семян осуществляли ежедневно, вплоть до прекращения появления новых проростков. Всходы считали массовыми при достижении 50%-го уровня прорастания семян в повторностях [23, 24].

Оценку качественных показателей проростков проводили на пятые сутки эксперимента. В каждой повторности всех пяти опытов учитывали по 10 растений (всего 50 растений по всем повторностям для каждой культуры), измеряли их высоту, см, длину корней, см, и вес зеленой биомассы, г. Итоговые результаты приведены в процентах от показателей в контроле, за 100 % приняты данные, полученные в контрольном варианте.

Интенсивность освещения в помещениях составляла в пасмурные дни 6, в солнечные — 20 кЛк, температура воздуха не превышала 25…26 ºС, влажность воздуха — 60 %. Для искусственного досвечивания посевов использовали белые светодиодные лампы марки 3HP2 3800–4300 K.

Для обработки полученных данных применяли методы описательной статистики, однофакторного дисперсионного и корреляционного анализов в программах Microsoft Excel и Statistica 8. Достоверность различий между вариантами принималась при значениях p < 0,05 (n = 50). При p > 0,05 различия по вариантам считались недостоверными. Коэффициент вариации V рассчитывался по формуле

V=σμ100%{V=\frac{σ}{μ}100%},

где σ — стандартное отклонение; μ — среднее значение. При V, %, меньше 10 степень рассеивания данных считается незначительной, если 10 < V < 20 — средней и при 20 < V < 33 — значительной.

Результаты исследования и обсуждение

Влияние субстратов на прорастание семян

Появление первых всходов. Вермикулитовые субстраты оказали положительное статистически значимое влияние на появление первых всходов у четырех овощных культур (свекла столовая, капуста белокочанная, капуста цветная, капуста пекинская) (табл. 4, опыты 1–4). В опыте со свеклой столовой наилучшие результаты отмечены в варианте с использованием термовермикулитов в качестве субстрата для прорастания, где первые всходы появились на два дня раньше, чем в контроле. В опытах с тремя видами капусты эта разница составила 1 день. На появление первых всходов семян салата кочанного вермикулитовые субстраты не оказали существенного влияния, результаты были одинаковые как в опытных, так и в контрольном вариантах — всходы появились одновременно во всех вариантах на вторые сутки от посева семян (табл. 4).

Таблица 4. Динамика появления всходов овощных культур

Культура

Субстрат

Количество всходов, шт.

НСР05**

1 сутки

2 сутки

3 сутки

4 сутки

5 сутки

Свекла
столовая

ТВ2-Н

33,4±1,1*

40,4±1,1

58,3±1,4

68,5±1,5

72,2±1,9

3,8

Випон-2

36,6±0,7

48,6±0,8

63,4±1,2

81,4±1,5

87,2±2,5

2,5

Почва

0

0

8,6±0,2

11,3±1,0

19,4±0,6

0,6

Капуста
белокочанная

ТВ2-Н

0

27,6±1,5

66,3±0,7

70,1±0,8

76,0±4,0

4,0

Випон-2

0

47,6±2,9

79,2±0,8

90,3±0,6

94,6±2,1

2,1

Почва

0

0

11,2±0,4

20,2±0,6

27,6±0,6

0,6

Капуста
цветная

ТВ2-Н

0

14,8±1,0

64,2±0,6

88,6±1,2

94,6±2,1

4,1

Випон-2

0

19,4±0,7

70,2±0,8

93,4±1,6

104,4±2,6

5,1

Почва

0

0

9,8±0,4

45,2±0,9

56,0±0,4

0,8

Капуста
пекинская

ТВ2-Н

0

30,8±0,6

72,3±0,9

86,7±0,6

95,6±0,3

0,6

Випон-2

0

27,6±0,9

65,1±0,6

77,3±0,6

82,0±0,2

0,5

Почва

0

0

18,2±1,2

54,3±0,4

68,8±0,4

0,7

Салат
кочанный

ТВ2-Н

0

67,0±1,2

89,0±1,0

98,0±0,5

107,8±0,6

1,2

Випон-2

0

59,2±0,9

79,4±0,9

84,1±0,7

90,8±0,8

1,6

Почва

0

52,8±1,0

67,3±0,9

70,2±0,9

74,4±0,9

1,7

Примечание. * — стандартная ошибка; ** — НСР05 на пятые сутки экспериментов.

Table 4. Dynamics of emergence of vegetable crops

Crop

Growing medium

Number of seedlings

LSD05**

1 day

2 days

3 days

4 days

5 days

Beetroot

TV2-H

33.4±1.1*

40.4±1.1

58.3±1.4

68.5±1.5

72.2±1.9

3.8

Vipon-2

36.6±0.7

48.6±0.8

63.4±1.2

81.4±1.5

87.2±2.5

2.5

Soil (c)

0

0

8.6±0.2

11.3±1.0

19.4±0.6

0.6

Cabbage

TV2-H

0

27.6±1.5

66.3±0.7

70.1±0.8

76.0±4.0

4.0

Vipon-2

0

47.6±2.9

79.2±0.8

90.3±0.6

94.6±2.1

2.1

Soil (c)

0

0

11.2±0.4

20.2±0.6

27.6±0.6

0.6

Cauliflower

TV2-H

0

14.8±1.0

64.2±0.6

88.6±1.2

94.6±2.1

4.1

Vipon-2

0

19.4±0.7

70.2±0.8

93.4±1.6

104.4±2.6

5.1

Soil (c)

0

0

9.8±0.4

45.2±0.9

56.0±0.4

0.8

Chinese cabbage

TV2-H

0

30.8±0.6

72.3±0.9

86.7±0.6

95.6±0.3

0.6

Vipon-2

0

27.6±0.9

65.1±0.6

77.3±0.6

82.0±0.2

0.5

Soil (c)

0

0

18.2±1.2

54.3±0.4

68.8±0.4

0.7

Lettuce

TV2-H

0

67.0±1.2

89.0±1.0

98.0±0.5

107.8±0.6

1.2

Vipon-2

0

59.2±0.9

79.4±0.9

84.1±0.7

90.8±0.8

1.6

Soil (c)

0

52.8±1.0

67.3±0.9

70.2±0.9

74.4±0.9

1.7

Note. * — standard error; ** — LSD05 on the fifth day of experiments.

Появление массовых всходов. Вермикулитовые субстраты оказали также положительное статистически значимое влияние на появление массовых всходов у тех же четырех овощных культур (свекла столовая, капуста белокочанная, капуста цветная, капуста пекинская). Они были зафиксированы на третьи сутки после посева семян. В опыте с салатом кочанным массовые всходы зафиксированы одновременно во всех трех вариантах, разница между ними была статистически незначимой. В контрольных вариантах опыта со свеклой столовой и капустой белокочанной количество проросших семян составляло менее 50 %, тогда как в опыте с капустой цветной этот максимум был зафиксирован только на пятые сутки от посева семян, т. е. на два дня позже, чем в вариантах с использованием вермикулитовых субстратов. В опыте с капустой пекинской всхожесть на уровне 50 % отмечена в вариантах с вермикулитовыми субстратами на одни сутки раньше, чем в контроле, и это различие было статистически значимо.

Расчет итоговой всхожести семян (общего количества взошедших семян) каждой из пяти овощных культур в проведенных экспериментах с достоверностью 95 % показал, что в вариантах с вермикулитовыми субстратами этот показатель был выше, чем в контроле с почвой (см. табл. 4).

Всхожесть семян была выше в варианте 2 (Випон-2), по сравнению с вариантом 1 (ТВ2-Н) и 3 (почва): в опыте 1 (свекла столовая) — на 15 и 68 %, опыте 2 (капуста белокочанная) — на 19 и 67 % и в опыте 3 (капуста цветная) — на 10 и 48 % соответственно. Более того, в опыте 3 всхожесть семян в варианте с использованием Випона-2 оказалась выше на 4 % относительно предпосевного определения данного показателя. В опытах № 4 и 5 (капуста пекинская и салат кочанный) лучшие результаты получены в варианте 1 с применением вермикулита ТВ2-Н, а разница с вариантом 2 и контролем составила 14/17 и 27/33 % соответственно, причем в варианте 1 (вермикулит ТВ2-Н) опыта 5 взошло на 8 % больше семян, чем при предпосевном определении всхожести с использованием фильтровальной бумаги.

Дисперсионный анализ итоговых данных о количестве взошедших семян подтвердил благоприятное воздействие влагоемких воздухопроницаемых вермикулитовых субстратов на всхожесть семян всех пяти овощных культур. Коэффициент вариации V был менее 19 % во всех вариантах опытов.

Влияние субстратов на биометрические показатели проростков

Высота проростков. В опытах со всеми пятью видами растений, высота проростков в вариантах с вермикулитовыми субстратами была выше, чем в контроле,%: в опыте 1 на 28 и 30, опыте 2 — на 11 и 2, опыте 3 — на 8 и 5, опыте 4 — на 28 и 18 и опыте 5 — на 11 и 11 для вариантов 1 и 2 соответственно (рис. 3). Статистически достоверные различия между опытными и контрольным вариантами были выявлены только в опытах 1, 4 и 5, в то время как в опыте 2 отличия являлись достоверными только между вариантом 1 и контролем, а в опыте 3 все отличия были недостоверными. Коэффициент вариации V составил величину менее 8,5 %.

Рис. 3. Высота сеянцев овощных растений при выращивании в вермикулитовых субстратах и почве. Различные буквы над столбцами указывают статистически значимое различие между вариантами субстратов
Источник: выполнила М.А. Ярцева с помощью Microsoft Excel

Fig. 3. Height of vegetable seedlings in vermiculite substrates and soil. Different lowercase letters indicate statistically significant differences between the variants of growing media
Source: created by Maria A. Yartseva using Microsoft Excel

Длина корней. Показатель длины корней проростков оказался более чувствительным к влиянию субстратов по сравнению с высотой проростков (рис. 4). Корни ювенильных растений были достоверно длиннее в опытных вариантах, чем в контроле,%: в опыте 1 — на 275 и 195, опыте 2 — на 217 и 170, опыте 3 — на 183 и 146, опыте 4 — на 204 и 73, опыте 5 — на 49 и 39 для вариантов 1 и 2 соответственно. При этом следует подчеркнуть, что этот биометрический показатель в вариантах с применением вермикулита ТВ2-Н во всех пяти опытах был выше по сравнению с вариантами с Випоном-2 на 80, 47, 37, 131 и 10 % соответственно. Такую разницу в длине корней проростков между опытными вариантами можно объяснить меньшей насыпной плотностью термовермикулита ТВ2-Н.

Рис. 4. Длина корней сеянцев овощных растений при выращивании в вермикулитовых субстратах и почве
Источник: выполнила М.А. Ярцева с помощью Microsoft Excel

Fig. 4. Root length of vegetable seedlings after growing in vermiculite substrates and soil
Source: created by Maria A. Yartseva using Microsoft Excel

Установлена положительная линейная корреляционная связь между длиной корней и высотой сеянцев всех культур (r = 0,6). Это позволило сделать вывод о том, что искусственные вермикулитовые субстраты-­почвозаменители способны создавать более благоприятные, по сравнению с почвой, условия для роста и развития корневой системы проростков изучаемых видов овощных культур, что способствует лучшему росту надземной части сеянцев. Коэффициент вариации V составил менее 14,2 %.

Накопление биомассы. Достоверные отличия в накоплении проростками овощных растений зеленой биомассы были отмечены только в опыте со свеклой столовой (рис. 5). В варианте 1 она на 100 %, а в варианте 2 всего на 8 % оказалась больше, чем в варианте 3 (контроль), при этом биомасса растений в варианте с применением вермикулитового субстрата ТВ2-Н была выше в два раза по сравнению с вариантом с использованием Випона и почвы. В остальных четырех опытах разница в массе сеянцев была несущественной. Коэффициент вариации V составил менее 17,3 %.

Рис. 5. Сырая биомасса проростков овощных растений при выращивании в вермикулитовых субстратах и почве
Источник: выполнила М.А. Ярцева с помощью Microsoft Excel

Fig. 5. Fresh weight of vegetable seedlings after growing in vermiculite substrates and soil
Source: created by Maria A. Yartseva using Microsoft Excel

Заключение

Результаты лабораторных экспериментов по проращиванию пяти перспективных для выращивания в Кольской Субарктике овощных культур (свеклы столовой, капусты белокочанной, капуста цветной, капуста пекинской и салата кочанного) показали статистически значимое влияние вермикулитовых субстратов (термовермикулита марки ТВ2-Н, термовермикулита Випон-2) на прорастание семян и биометрические параметры сеянцев.

Вермикулитовые субстраты способствовали более интенсивному, по сравнению с почвой, прорастанию семян, росту надземной части и корней сеянцев. Достоверные отличия в накоплении проростками овощных растений зеленой биомассы были отмечены только в опыте со свеклой столовой, тогда как у других четырех видов разница в массе сеянцев была несущественной.

Корреляционный анализ показал, что термовермикулит маркировки ТВ2-Н, благодаря его меньшей, по сравнению с другим почвозаменителем (Випон-2), насыпной плотности, способен создавать более благоприятные условия для роста корневой системы проростков изучаемых видов овощных культур и тем самым оказывает более существенное влияние на рост надземной части сеянцев и качественные показатели проростков, в связи с чем может быть рекомендован для применения в растениеводстве при проращивании семян овощных культур.

×

Об авторах

Мария Александровна Ярцева

Кольский научный центр РАН

Автор, ответственный за переписку.
Email: 468975@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-7560-6339
SPIN-код: 9820-0196

аспирант, ведущий инженер, лаборатория интродукции и акклиматизации растений, Полярно-альпийский ботанический сад-институт им. Н.А. Аврорина

Российская Федерация, 184209, Мурманская область, г. Апатиты, мкрн. Академгородок, д. 18 а

Ирина Петровна Кременецкая

Кольский научный центр РАН

Email: i.kremenetskaia@ksc.ru
ORCID iD: 0000-0003-3531-8273
SPIN-код: 7227-0180

старший научный сотрудник, Институт химии и технологии редких элементов и минерального сырья им. И.В. Тананаева

184209, г. Апатиты, ул. Академгородок, д. 26 а

Любовь Андреевна Иванова

Кольский научный центр РАН

Email: ivanova_la@inbox.ru
ORCID iD: 0000-0002-7994-5431
SPIN-код: 5752-3648

главный научный сотрудник, лаборатория декоративного цветоводства и озеленения, Полярноальпийский ботанический сад-институт им. Н.А. Аврорина Федерального исследовательского центра «Кольский научный центр Российской академии наук»; ведущий научный сотрудник, Институт проблем промышленной экологии Севера Федерального исследовательского центра «Кольский научный центр Российской академии наук»

Российская Федерация, 184209, Мурманская область, г. Апатиты, мкрн. Академгородок, д. 18 а

Марина Вячеславовна Слуковская

Кольский научный центр РАН

Email: m.slukovskaya@ksc.ru
ORCID iD: 0000-0002-5406-5569
SPIN-код: 8540-8055

старший научный сотрудник, лаборатория природоподобных технологий и техносферной безопасности Арктики, ФИЦ Кольский научный центр РАН ; Институт химии и технологии редких элементов и минерального сырья им. И.В. Тананаева - обособленное подразделение федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра «Кольский научный центр» Российской академии наук

Российская Федерация, 184209, г. Апатиты, ул. Ферсмана, д. 14; 184209, г. Апатиты, ул. Академгородок, д. 26 а

Список литературы

  1. Чепик Ф.А. Этапы онтогенеза древесных растений и их использование в диагностических целях // Материалы 3-го международного совещания «Сохранение лесных генетических ресурсов Сибири», Красноярск, Россия / Учреждение Российской академии наук Институт леса им. В.Н. Сукачева СО РАН. 2011. С. 147.
  2. Науменко Н.В., Потороко И.Ю., Науменко Е.Е. Применение шкалы микрофенологических фаз для процесса контролируемого проращивания зерна пшеницы // Вестник Южно-Уральского государственного университета. 2021. Т. 9. № 2. С. 47-56. doi: 10.14529/food210205
  3. Гэлстон А., Девис П., Сэттер Р. Жизнь зеленого растения: пер. с англ. / ред. Н.П. Воскресенская. М.: Мир, 1983. 552 с.
  4. Филиппова Г.В., Андросова Д.Н., Филиппов Э.В. Прокопьев И.А. Влияние температуры и осадков на морфологию, прорастание и стрессоустойчивость семян некоторых представителей флоры Севера // Экология. 2019. № 6. С. 410-418. doi: 10.1134/S0367059719050044
  5. Бисенова Г.Н., Сармурзина З.С., Ракишев К.Б., Закарья К.Д., Ракишева А.К. Разработка биосубстрата как стимулятора роста для выращивания органических видов сельскохозяйственных культур // Вестник Евразийского национального университета имени Л.Н. Гумилева. 2022. № 4 (141). С. 37-44. doi: 10.32523/2616-7034-2022-141-4-37-44
  6. Борисова Н.Н., Седенко Д.М., Овчаров К.Е. Превращение веществ в семенах кукурузы, проращиваемых при различных температурах // Биологические основы повышения качества семян сельскохозяйственных растений. М.: Наука, 1964. С. 87.
  7. Вендило Г., Солдатова С., Аврамова Т. Субстраты для выращивания овощей без почвы // Картофель и овощи. 1965. № 10. С. 26.
  8. Болотников Д.П. Вермикулит. Мурманск: Кн. изд-во, 1964. 50 с.
  9. Львова И.А., Дьяконов Ю.С. Минералогические особенности вермикулитового месторождения СССР как критерий их качества // Исследование и применение вермикулита. Л.: Наука, 1969. С. 53-54.
  10. Иванова Л.А. Гидропонное выращивание декоративноцветочных растений с использованием вермикулита ковдорского месторождения: препр. Апатиты, 1989. 16 с.
  11. Иванова Л.А., Слуковская М.В., Кременецкая И.П., Горбачёва Т.Т. Пора озеленять Арктику. Инновационные газонные технологии для создания травяного покрова различного назначения в условиях Заполярья. Апатиты: Изд-во ФИЦ КНЦ РАН, 2020. 37 с.
  12. Иванова Л.А. Технология выращивания альстромерии гибридной в Заполярье // Информ. листок Мурм. межотрасл. террит. ЦНТИ и пропаганды, 1996. № 152. 96 с.
  13. Бухаров А.Ф., Балеев Д.Н., Бухарова А.Р. Кинетика прорастания семян. Методы исследования и параметры // Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. 2017. № 2. С. 5-19.
  14. Иванова Л.А., Котельников В.А. Перспективы гидропонного выращивания растений в условиях Мурманской области. Апатиты: Изд-во Кольского научного центра РАН, 2006. 106 с.
  15. Иванова Л.А. Ковдорский вермикулит - гидропонный субстрат для северного растениеводства (Кольский полуостров) // Экология северных территорий России. Проблемы, прогноз ситуации, пути развития, решения: тез. докл. Междунар. конференции, г. Архангельск. 2002. Т. 1. С. 166-168.
  16. Иванова Л.А. Особенности ускоренного формирования высококачественных газонных фитоценозов в условиях Заполярья // Субтропическое и декоративное садоводство: сб. науч. тр. / ГНУ ВНИИЦиСК Россельхозакадемии. 2013. № 49. С. 224-227.
  17. Нижегородов А.И. Электрические модульноспусковые печи с системой рекуперации энергии для обжига вермикулитовых концентратов // Новые огнеупоры. 2015. № 10. С. 22-27. doi: 10.17073/1683-4518-2015-10-22-27
  18. Звездин А.В., Нижегородов А.И. Оценка энерго-эффективности подвесной нагревательной системы электрической печи для тепловой обработки сыпучих материалов // Вестник ИрГТУ. 2019. Т. 23. № 1. С. 41-53.
  19. Иванова Л.А., Котельников В.В., Быкова А.Е. Физико-химическая трансформация минерала вермикулита в субстрат для выращивания растений // Вестник МГТУ. 2006. Т. 9. № 5. С. 883-889.
  20. Мосендз И.А., Кременецкая И.П. Оценка влияния способов термообработки вермикулита для применения его в качестве гидропонного субстрата // Труды Ферсмановской научной сессии ГИ КНЦ РАН. 2022. № 19. С. 248-252. doi: 10.31241/FNS.2022.19.045
  21. Высочкина Л.И., Высочкина Т.Н. Повышение урожайности сельскохозяйственных культур за счет накопления влаги в почве // Технические науки - от теории к практике. 2014. № 38. С. 93-99.
  22. Сотченко В.С., Горбачева А.Г., Ветошкина И.А., Соломко В.И. Методика определения лабораторной всхожести и силы роста семян // Кукуруза и сорго. 2021. № 1. С. 12-24. doi: 10.25715/o8981-6773-2383-a
  23. Веллингтон П. Методика оценки проростков семян / под ред. Н.Г. Хорошайлова. М.: Колос, 1973. 175 с.
  24. Алексейчук Г.Н., Ламан Н.А. Физиологическое качество семян сельскохозяйственных культур и методы его оценки. Мн.: Право и экономика, 2005. 48 с.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. Рис. 1. Последовательность процессов прорастания сухих семян цветковых двудольных растений: 1 — покой; 2 — набухание; 3 — наклевывание; 4 — рост первичных корешков; 5 — развитие ростка; 6 — становление ростка

Скачать (71KB)
2. Рис. 2. Вспученные гофрированные гранулы термовермикулита

Скачать (211KB)
3. Рис. 3. Высота сеянцев овощных растений при выращивании в вермикулитовых субстратах и почве. Различные буквы над столбцами указывают статистически значимое различие между вариантами субстратов

Скачать (107KB)
4. Рис. 4. Длина корней сеянцев овощных растений при выращивании в вермикулитовых субстратах и почве

Скачать (97KB)
5. Рис. 5. Сырая биомасса проростков овощных растений при выращивании в вермикулитовых субстратах и почве

Скачать (64KB)

© Ярцева М.А., Кременецкая И.П., Иванова Л.А., Слуковская М.В., 2024

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах