Преимущества и недостатки метода локального отрицательного давления при лечении ран у лошадей

Полный текст

Введение

Лечение ран у лошадей остается одной из ключевых задач ветеринарной медицины, особенно в случаях сложных повреждений, сопровождающихся инфекцией и замедленной регенерацией [1–4].

Традиционные методы, такие как использование антисептиков и перевязочных материалов, часто не обеспечивают необходимой скорости и качества заживления, особенно в случаях, осложненных инфекцией или при длительно незаживающих ранах [2–5].

Применение физико-­химических методов воздействия на раневую поверхность характеризуется обширной исторической ретроспективой, предшествующей развитию антибактериальной терапии. Традиционный терапевтический арсенал включал методы термического воздействия, фототерапии и криоаппликации. В современной хирургической практике лечения гнойно-­некротических процессов активно применяются высокотехнологичные физические методы, такие как лазерная терапия, ультразвуковое воздействие, криохирургические методики, гидрохирургический дебридмент и вакуум-­терапия [2–4, 6–13]. В связи с этим в последние годы активно развиваются новые технологии и материалы, направленные на оптимизацию регенерации тканей и сокращение времени заживления, а также профилактику вероятных осложнений.

Одним из таких инновационных методов является терапия локальным отрицательным давлением (ЛОД, negative pressure wound therapy, NPWT) [6–19]. Этот метод основан на создании контролируемого отрицательного давления в области раны, что способствует удалению экссудата, уменьшению отека и стимуляции кровообращения. Механизм действия ЛОД заключается в улучшении микроциркуляции и активации клеточных процессов, способствующих ускоренному заживлению и снижению риска инфекционных осложнений.

Улучшение микроциркуляции и активация клеточных процессов инициирует ряд сложных биохимических реакций:

1) регуляцию интерстициального гидростатического давления. ЛОД способствует снижению интерстициального давления, что приводит к уменьшению отека путем усиления лимфодренажа и активизации процессов в сосудах микроциркуляторного русла. Этот эффект улучшает перфузию тканей, обеспечивая более оперативную доставку кислорода и нутриентов к зоне повреждения;

2) удаление избыточного экссудата. Отрицательное давление обеспечивает активное удаление раневого экссудата, содержащего продукты клеточного распада, матриксные металлопротеиназы и провоспалительные цитокины. Это способствует снижению воспалительной реакции и создает оптимальные условия для пролиферации и миграции фибробластов. Вследствие этих процессов снижается вероятность возникновения посттравматических осложнений, таких как серома;

3) поддержание оптимального уровня влажности. Герметизация раневой поверхности обеспечивает сохранение влажной среды, критически важной для эффективной эпителизации. Влажная среда способствует активации факторов роста, таких как эпидермальный фактор роста (EGF) и фактор роста фибробластов (FGF), стимулирующих пролиферацию и миграцию кератиноцитов;

4) стимуляцию ангиогенеза и неоваскуляризации. ЛОД индуцирует экспрессию проангиогенных факторов, включая фактор роста эндотелия сосудов (VEGF) и ангиопоэтин‑2. Это приводит к формированию новых капилляров и улучшению микроциркуляции в зоне повреждения, что особенно важно для обеспечения адекватного снабжения кислородом и питательными веществами регенерирующих тканей;

5) снижение бактериальной контаминации. Активное удаление экссудата и улучшение микроциркуляции способствуют снижению бактериальной контаминации за счет своевременного удаления продуктов распада, некротизированных тканей и инородных частиц. Кроме того, ЛОД может стимулировать продукцию антимикробных пептидов, таких как дефензины и кателицидины, усиливая местный иммунный ответ;

6) механотрансдукцию и ремоделирование внеклеточного матрикса. Отрицательное давление создает механическое напряжение в тканях, которое через интегрин-­опосредованные сигнальные пути стимулирует пролиферацию и дифференцировку фибробластов. Это приводит к усилению синтеза коллагена и других компонентов внеклеточного матрикса, способствуя формированию более прочной и функциональной соединительной ткани.

Зарубежные исследования подтверждают перспективность метода локального отрицательного давления в лечении ран у лошадей, особенно при сложных и инфицированных повреждениях (табл. 1). Отмечается ускорение заживления, снижение бактериальной обсемененности и улучшение качества грануляционной ткани. Однако в публикациях подчеркивается необходимость дальнейших исследований для стандартизации протоколов и оптимизации применения метода в зависимости от анатомических особенностей и типа раны.

Таблица 1
Литература с указанием продолжительности и частоты смены повязок  во время лечения методом ЛОД

Источник	Продолжительность лечения	Частота смены повязок
Gemeinhardt K.D. and Molnar J.A. [15]	29 дней	Каждые 3–4 дня
Rijkenhuizen et al. [19]	1‑й случай: 19 дней 2‑й случай: 18 дней	1‑й случай: на 8-, 11- и 14‑й дни после операции 2‑й случай: через 11 дней
Jordana M. et al. [17]	5 дней	Не меняли повязку
Van Hecke L. et al. [13]	24 часа	Через 6, 12, 18, 24 часа после начала эксперимента ex vivo
Gaus, M. et al. [14]	6 дней	Не меняли повязку
Florczyk A., Rosser J. [10]	14 дней	Каждые 3–4 дня
Rettig M.J., Lischer C.J. [12]	12 дней	Каждые 2 дня
Elce Y. et al. [9]	От 11 до 22 дней	Каждые 3–4 дня
Kamus L. et al. [11]	Экспериментальная рана — 7 дней	Экспериментальное исследование: до 3-4 раз в день из-за нарушения поддержания вакуума
Haspeslagh M. et al. [16]	6 дней — инфицированные раны 9 дней — неинфицированные раны	Данные не представлены
Launois T. et al. [18]	2–36 дней (в среднем 11 дней)	1–7 дней (в среднем 4 дня)
Askey T. et al. [8]	От 4 до 70 дней (в среднем 19 дней)	Каждые 7 дней

Источник: выполнено А.А. Скворцовой, Е.А. Павловской, В.Н. Оболенским.

Table 1
List of references indicating the duration and frequency  of dressing changes during treatment with the LNP method

Reference	Duration of treatment	Frequency of dressing changes
Gemeinhardt K.D. and Molnar J.A. [15]	29 days	Every 3–4 days
Rijkenhuizen et al. [19]	Case 1: 19 days Case 2: 18 days	Case 1: on days 8, 11, and 14 after surgery Case 2: after 11 days
Jordana M. et al. [17]	5 days	No dressing change
Van Hecke L. et al. [13]	24 hours	After 6, 12, 18, 24 hours after the start of the ex vivo experiment
Gaus, M. et al. [14]	6 days	No dressing change
Florczyk A., Rosser J. [10]	14 days	Every 3–4 days
Rettig M.J., Lischer C.J. [12]	12 days	Every 2 days
Elce Y. et al. [9]	11 to 22 days	Every 3–4 days
Kamus L. et al. [11]	Experimental wound — 7 days	Experimental study: up to 3-4 times a day due to failure to maintain vacuum
Haspeslagh M. et al. [16]	6 days — infected wounds 9 days — non-infected wounds	Data not presented
Launois T. et al. [18]	2–36 days (average 11 days)	1–7 days (average 4 days)
Askey T. et al. [8]	4 to 70 days (average 19 days)	Every 7 days

Source: completed by A.A. Skvortsova, E.A. Pavlovskaya, V.N. Obolenskiy.

Таким образом, метод ЛОД представляет собой многофакторный подход к оптимизации процесса заживления ран, воздействуя на ключевые молекулярные и клеточные механизмы регенерации тканей. Применение данной технологии открывает новые перспективы в ветеринарной медицине, предлагая эффективные решения для лечения осложненных инфекцией.

Цель исследования — комплексный анализ эффективности, преимуществ и недостатков метода локального отрицательного давления при лечении ран различной этиологии у лошадей.

Материалы и методы исследования

Исследование провели на 4 лошадях различных пород и возрастов с ранами различной этиологии (травматические и послеоперационные), которые разделили на 2 группы (табл. 2):

1) контрольная группа: лечение лошадей с ранами традиционным способом, включавшим использование стандартных антисептических растворов (Хлоргексидин) и местной антибактериальной терапией (Террамицин и Сультеприм);

2) экспериментальная группа: лечение осложненных ран методом локального отрицательного давления (ЛОД-терапия) с применением специально разработанной повязки для создания контролируемого отрицательного давления в области раневой поверхности, предварительно обработанной раствором Бетадина.

Таблица 2
Характеристика ран по локализации и этиологии

Лошадь	Локализация	Этиология
Экспериментальная группа
1	В области живота	Осложненная инфекцией послеоперационная рана
2	Область предплечья	Рваная травматическая рана
Контрольная группа
1	В области живота	Осложненная инфекцией послеоперационная рана
2	Вентральная стенка грудной области	Рваная травматическая рана

Источник: выполнено А.А. Скворцовой, Е.А. Павловской, В.Н. Оболенским.

Table 2
Characteristics of wounds by location and etiology

Horse	Localization	Etiology
Experimental group
1	In the abdominal area	Postoperative wound complicated by infection
2	Forearm area	Avulsive traumatic wound
Control group
1	In the abdominal area	Postoperative wound complicated by infection
2	Ventral wall of the thoracic area	Avulsive traumatic wound

Source: completed by A.A. Skvortsova, E.A. Pavlovskaya, V.N. Obolenskiy.

В исследовании использовали комплексный методический подход, включающий: сбор анамнестических данных, клинический осмотр животного, исследование зоны патологического процесса, цитоморфологическое и бактериологическое исследования, которые проводились на 1-, 7-, 14- и 30‑й дни.

Метод локального отрицательного давления применялся с использованием стандартных вакуумных систем, включающих губчатый материал, герметизирующую пленку и устройство для создания отрицательного давления. Уровень отрицательного давления варьировался от –80 до –125 мм рт. ст. в зависимости от локализации и характера раны.

В нашем исследовании была применена методика терапии ЛОД для лечения осложненных постоперационных и травматических ран у лошадей. В качестве компонентов современной повязки для ЛОД мы использовали одноразовые стерильные расходные материалы (рис. 1):

1) пенополиуретановая губка: использовалась губка с размером пор от 400 до 2000 мкм. Выбор данного диапазона обусловлен оптимальным балансом между эффективным дренированием раневого экссудата и стимуляцией грануляционной ткани. Пористая структура губки способствует равномерному распределению отрицательного давления по всей поверхности раны, что улучшает микроциркуляцию и стимулирует ангиогенез;

2) адгезивное пленочное покрытие Suprasorb (Германия) или Холмекс (Китай): данное покрытие применялось для создания герметичной среды вокруг раны. Оно обеспечивает барьер для внешних контаминантов и поддерживает влажную среду, необходимую для оптимального заживления. Выбор Suprasorb обусловлен его высокими адгезивными свой­ствами и газопроницаемостью;

3) гибкая дренажная трубка: использовалась трубка достаточной длины для эффективного отведения экссудата. Необходимую длину трубки определяли в зависимости от локализации раны и места фиксации вакуумного стабилизатора. Гибкость трубки минимизирует дискомфорт животного и снижает риск механического повреждения окружающих тканей;

4) вакуумный аспиратор ВаСта (НПП МЕДИКА, Москва): данное устройство применялось для создания и поддержания субатмосферного давления в диапазоне от –50 до –125 мм рт. ст. Выбор конкретного уровня давления зависел от типа, размера раны и стадии заживления. С динамикой уменьшения площади поверхности раны субатмосферное давление необходимо снижать;

5) контейнер для сбора экссудата: использовался градуированный контейнер объемом 500…1000 мл, что позволяло точно оценивать количество и характер экссудата, важные показатели для мониторинга процесса заживления. Также при сборе экссудата в данный контейнер есть возможность параллельного осуществления отбора материала для цитологических и микробиологических исследований;

6) бандаж или подвесной чехол: применялся для надежной фиксации оборудования на лошади, обеспечивая стабильность системы, безопасность и комфорт животного во время лечения. В зависимости от локализации необходима разработка различных модификаций бандажей (рис. 2).

Рис. 1. Оборудование и расходные материалы для терапии ЛОД
Источник: выполнено А.А. Скворцовой, Е.А. Павловской, В.Н. Оболенским.
Fig. 1. Equipment and consumables for NPWT
Source: completed by A.A. Skvortsova, E.A. Pavlovskaya, V.N. Obolenskiy.

 Рис. 2. Особенности бандажа для крепления устройства
Источник: выполнено А.А. Скворцовой, Е.А. Павловской, В.Н. Оболенским.
Fig. 2. Features of the bandage for attaching the device
Source: completed by A.A. Skvortsova, E.A. Pavlovskaya, V.N. Obolenskiy.

Методика применения

Подготовка раневой поверхности к применению метода ЛОД является ключевым этапом, определяющим эффективность последующего лечения. Первоначально проводится тщательная механическая санация раневой поверхности с удалением некротических тканей и инородных тел до появления капиллярного кровотечения. После достижения адекватного гемостаза осуществляется антисептическая обработка раны с использованием современных антисептических растворов, не оказывающих цитотоксического действия на ткани. Особое внимание уделяется подготовке околораневой области, которая включает удаление шерстного покрова и обработку кожи антисептическими растворами. Для улучшения адгезии герметизирующей пленки производится тщательное обезжиривание кожных покровов вокруг раны. Кожа вокруг раны выбривалась в радиусе 5…7 см для улучшения адгезии. Затем область обрабатывалась мыльным раствором (pH 5,5) и антисептиком Бетадин (10 % раствор повидон-йода). После высушивания на кожу наносилась паста Абуцел для выравнивания поверхности и улучшения адгезии пленочного покрытия (рис. 3). Пенополиуретановая губка вырезалась по форме раны с запасом 1–2 см и помещалась непосредственно на раневую поверхность (рис. 4). Затем рана герметично закрывалась адгезивным пленочным покрытием Suprasorb от центра к периферии, выходящим за края раны на 3…5 см. В пленке выполнялось отверстие диаметром 1–2 см для подключения дренажной трубки (рис. 5, 6).

Крепление вакуумной повязки в области живота и на конечностях у лошадей имеет существенные различия, обусловленные анатомическими и функциональными особенностями этих зон. Эти различия влияют на выбор материалов, технику фиксации и общую эффективность метода локального отрицательного давления.

В области живота основной сложностью является высокая подвижность брюшной стенки, связанная с дыхательными движениями и активностью животного. Брюшная стенка постоянно изменяет свою форму, что создает трудности для поддержания герметичности системы. Важно учитывать, что в области живота требуется более тщательная подготовка кожи, включая обезжиривание и удаление шерсти, чтобы обеспечить надежное сцепление пленки с кожей (рис. 3–5).

 Рис. 3. Нанесение пасты вокруг раны
Источник: выполнено А.А. Скворцовой, Е.А. Павловской, В.Н. Оболенским.
Fig. 3. Applying paste around the wound
Source: completed by A.A. Skvortsova, E.A. Pavlovskaya, V.N. Obolenskiy.

Рис. 4. Крепление ППУ губки и адгезивного пленочного покрытия к ране
Источник: выполнено А.А. Скворцовой, Е.А. Павловской, В.Н. Оболенским.
Fig. 4. Attaching the urethane-foam sponge and adhesive film to the wound
Source: completed by A.A. Skvortsova, E.A. Pavlovskaya, V.N. Obolenskiy.

Рис. 5. Вид повязки для метода ЛОД
Источник: выполнено А.А. Скворцовой, Е.А. Павловской, В.Н. Оболенским.
Fig. 5. Type of dressing for the LNP method
Source: completed by A.A. Skvortsova, E.A. Pavlovskaya, V.N. Obolenskiy.

Рис. 6. Конфигурация повязки для метода ЛОД
Источник: выполнено А.А. Скворцовой, Е.А. Павловской, В.Н. Оболенским.

 Fig. 6. Configuration of the dressing for the LNP method
Source: completed by A.A. Skvortsova, E.A. Pavlovskaya, V.N. Obolenskiy.

На конечностях сложная анатомическая структура, включающая суставы, сухожилия и костные выступы. Эти особенности создают неровности поверхности, которые могут препятствовать герметичному прилеганию повязки. Кроме того, конечности лошади подвержены значительным механическим нагрузкам и трению, что увеличивает риск смещения повязки (рис. 11).

Важным аспектом является правильный подбор уровня отрицательного давления, который обычно варьируется в пределах от –80 до –125 мм рт. ст., в зависимости от характера раны. Особое значение при проведении вакуум-­терапии в области живота имеют контроль состояния повязки и мониторинг общего состояния животного. Необходимо регулярно оценивать целостность герметизирующей пленки, степень наполнения контейнера экссудатом. Периодичность смены повязки определяется индивидуально, основываясь на герметичности повязки, количестве экссудата и динамике раневого процесса. Длительность применения ЛОД определяется индивидуально, основываясь на динамике раневого процесса и общем состоянии животного. Обычно курс лечения составлял от 5 до 14 дней.

Результаты исследования и обсуждение

У исследуемых лошадей, в целях профилактики послеоперационных и постравматических инфекционных осложнений, проводилась обработка кожных швов раствором хлоргексидина с последующим орошением террамицина в форме спрея. Кроме того, аппликационно был использован антибиотик сультеприм. Однако, данные меры не предотвратили возникновение осложнений. При осмотре было зафиксировано расхождение швов с последующим развитием инфекционного процесса. Раневая поверхность имела признаки воспаления: выраженная гиперемия окружающих тканей, отек, экссудация серозно-­гнойного характера, и болезненность при пальпации. Отмечалось наличие некротических тканей в области швов. Края раны были неровные, не сопоставлены, а в глубине раневого канала определялся патологический секрет с неприятным запахом (табл. 3).

Таблица 3
Срок заживления ран в экспериментальной и контрольной группах

Экспериментальная группа
Лошадь	Характеристика раны	Частота смены повязки, продолжительность применения	Параметры ЛОД	Срок заживления
1	Гиперемия окружающих тканей, отек, наличие некротизированных участков ткани, экссудация серозно-­гнойного характера, и болезненность при пальпации. Фаза воспаления	Повязки менялись ежедневно, –125 мм.рт.ст. Продолжительность — 14 дней	–125 мм.рт.ст прерывистый	30 дней
2	Гиперемия окружающих тканей, отек, наличие некротизированных участков ткани, экссудация серозно-­гнойного характера, и болезненность при пальпации. Фаза воспаления	Повязка менялась каждые 3 дня, –125 мм.рт.ст. Продолжительность — 14 дней	–125 мм.рт.ст прерывистый	70 дней
Контрольная группа
1	Гиперемия окружающих тканей, отек, наличие некротизированных участков ткани, экссудация серозно-­гнойного характера, и болезненность при пальпации. Фаза воспаления	Ежедневно	—	64 дня
2	Обширный некроз тканей, экссудация серозно-­гнойного характера. Фаза воспаления	Ежедневно	—	80 дней

Источник: выполнено А.А. Скворцовой, Е.А. Павловской, В.Н. Оболенским.

Table 3
Wound healing time in the experimental and control groups

Experimental group
Horse	Wound characteristics	Frequency of dressing change, duration of use	LNP parameters	Healing period
1	Hyperemia of surrounding tissues, edema, presence of necrotic tissue areas, serous-­purulent exudation, and tenderness on palpation. Inflammatory phase	Dressings were changed daily, –125 mmHg. Duration — 14 days	–125 mmHg intermittent	30 days
2	Hyperemia of surrounding tissues, edema, presence of necrotic tissue areas, serous-­purulent exudation, and tenderness on palpation. Inflammatory phase	Dressing was changed every 3 days, –125 mmHg. Duration — 14 days	–125 mmHg intermittent	70 days
Control group
1	Hyperemia of surrounding tissues, edema, presence of necrotic tissue areas, serous-­purulent exudation, and tenderness on palpation. Inflammatory phase	Daily	—	64 days
2	Extensive tissue necrosis, serous-­purulent exudation. Inflammatory phase	Daily	—	80 days

Source: completed by A.A. Skvortsova, E.A. Pavlovskaya, V.N. Obolenskiy.

Результаты цитоморфологического и бактериологического исследований, которые проводились на 1, 7, 14 и 30 дни приведены в табл. 4.

Таблица 4
Результаты лабораторных исследований

Лошадь	Лабораторные исследования	1 день	7 день	14 день	30 день
Экспериментальная группа
1	Цитология	Нейтрофильная и лимфоцитарная инфильтрация, обильная кокковая флора +++	Нейтрофильная и лимфоцитарная инфильтрация, умеренная кокковая флора ++	Нейтрофильная инфильтрация + кератиноциты ++	—
	Микробиология	Escherichia coli от 104 КОЕ до 106 КОЕ/тампон; Streptococcus spp. от 102 КОЕ до 104 КОЕ/тампон, Staphylococcus spp. от 104 КОЕ до 106 КОЕ/тампон	Staphylococcus aureus от 104 КОЕ до 106 КОЕ/тампон;	Staphylococcus aureus от 102 КОЕ до 104 КОЕ/тампон	—
2	Цитология	Нейтрофильная и лимфоцитарная инфильтрация, обильная кокковая флора +++	Нейтрофильная и лимфоцитарная инфильтрация, умеренная кокковая флора ++	Нейтрофильная инфильтрация + Кератиноциты +++	—
	Микробиология	Proteus mirabillis от 104 КОЕ до 106 КОЕ/тампон. Enterobacter aerogenes от 102 КОЕ до 104 КОЕ/тампон. Staphylococcus epidermidis от 102 КОЕ до 104 КОЕ/тампон.	Staphylococcus epidermidis от 102 КОЕ до 104 КОЕ/тампон.	Staphylococcus epidermidis от 102 КОЕ до 104 КОЕ/тампон.	—
	Контрольная группа
1	Цитология	Нейтрофильная и лимфоцитарная инфильтрация, обильная кокковая флора +++	Нейтрофильная и лимфоцитарная инфильтрация, обильная кокковая флора +++	Нейтрофильная и лимфоцитарная инфильтрация, умеренная кокковая флора ++	Нейтрофильная и лимфоцитарная инфильтрация, умеренная кокковая флора +
	Микробиология	Staphylococcus aureus от 104 КОЕ до 106 КОЕ/тампон. Proteus mirabillis от 102 КОЕ до 104 КОЕ/тампон. Escherichia coli от 104 КОЕ до 106 КОЕ/тампон.	Staphylococcus aureus от 104 КОЕ до 106 КОЕ/тампон. Escherichia coli от 104 КОЕ до 106 КОЕ/тампон.	Staphylococcus aureus от 104 КОЕ до 106 КОЕ/тампон. Proteus mirabillis от 102 КОЕ до 104 КОЕ/тампон. Escherichia coli от 104 КОЕ до 106 КОЕ/тампон.	Escherichia coli от 104 КОЕ до 106 КОЕ/тампон.
2	Цитология	Нейтрофильная и лимфоцитарная инфильтрация, обильная кокковая флора +++	Нейтрофильная и лимфоцитарная инфильтрация, обильная кокковая флора +++	Нейтрофильная и лимфоцитарная инфильтрация, умеренная кокковая флора ++	Нейтрофильная и лимфоцитарная инфильтрация, умеренная кокковая флора + Кератиноциты +
	Микробиология	Staphylococcus aureus от 104 КОЕ до 106 КОЕ/тампон, Proteus mirabilis от 102 КОЕ до 104 КОЕ/тампон, Enterobacter aerogenes от 104 КОЕ до 106 КОЕ/тампон.	Staphylococcus aureus от 104 КОЕ до 106 КОЕ/тампон, Proteus mirabilis от 102 КОЕ до 104 КОЕ/тампон, Staphylococcus epidermidis от 102 КОЕ до 104 КОЕ/тампон.	Staphylococcus aureus от 104 КОЕ до 106 КОЕ/тампон, Proteus mirabilis от 102 КОЕ до 104 КОЕ/тампон	Staphylococcus aureus от 104 КОЕ до 106 КОЕ/тампон

Источник: выполнено А.А. Скворцовой, Е.А. Павловской, В.Н. Оболенским.

Table 4
Laboratory results

Horse	Laboratory research	1 day	7 day	14 day	30 day
Experimantal group
1	Cytology	Neutrophilic and lymphocytic infiltration, abundant coccal flora +++	Neutrophilic and lymphocytic infiltration, moderate coccal flora ++	Neutrophilic infiltration + Keratinocytes ++	—
	Microbiology	Escherichia coli from 104 CFU to 106 CFU/swab; Strep-tococcus spp. from 102 CFU to 104 CFU/swab, Staphylococcus spp. from 104 CFU to 106 CFU/swab	Staphylococcus aureus from 104 CFU to 106 CFU/swab;	Staphylococcus aureus from 102 CFU to 104 CFU/swab	—
2	Cytology	Neutrophilic and lymphocytic infiltration, abundant coccal flora +++	Neutrophilic and lymphocytic infiltration, moderate coccal flora ++	Neutrophilic infiltration + Keratinocytes +++	—
	Microbiology	Proteus mirabillis from 104 CFU to 106 CFU/tampon. Enterobacter aerogenes from 102 CFU to 104 CFU/tampon. Staphylococcus epidermidis from 102 CFU to 104 CFU/tampon.	Staphylococcus epidermidis from 102 CFU to 104 CFU/swab.	Staphylococcus epidermidis from 102 CFU to 104 CFU/swab.	—
	Control group
1	Cytology	Neutrophilic and lymphocytic infiltration, abundant coccal flora +++	Neutrophilic and lymphocytic infiltration, abundant coccal flora +++	Neutrophilic and lymphocytic infiltration, moderate coccal flora ++	Neutrophilic and lymphocytic infiltration, moderate coccal flora +
1	Microbiology	Staphylococcus aureus from 104 CFU to 106 CFU/swab. Proteus mirabilis from 102 CFU to 104 CFU/swab. Escherichia coli from 104 CFU to 106 CFU/swab.	Staphylococcus aureus from 104 CFU to 106 CFU/swab. Escherichia coli from 104 CFU to 106 CFU/swab.	Staphylococcus aureus from 104 CFU to 106 CFU/swab. Proteus mirabilis from 102 CFU to 104 CFU/swab. Escherichia coli from 104 CFU to 106 CFU/swab.	Escherichia coli from 104 CFU to 106 CFU/swab.
2	Cytology	Neutrophilic and lymphocytic infiltration, abundant coccal flora +++	Neutrophilic and lymphocytic infiltration, abundant coccal flora +++	Neutrophilic and lymphocytic infiltration, moderate coccal flora ++	Neutrophilic and lymphocytic infiltration, moderate coccal flora + Keratinocytes +
	Microbiology	Staphylococcus aureus from 104 CFU to 106 CFU/swab, Proteus mirabilis from 102 CFU to 104 CFU/swab, Enterobacter aerogenes from 104 CFU to 106 CFU/swab.	Staphylococcus aureus from 104 CFU to 106 CFU/swab, Proteus mirabilis from 102 CFU to 104 CFU/swab, Staphylococcus epidermidis from 102 CFU to 104 CFU/swab.	Staphylococcus aureus from 104 CFU to 106 CFU/swab, Proteus mirabilis from 102 CFU to 104 CFU/swab	Staphylococcus aureus from 104 CFU to 106 CFU/swab

Source: completed by A.A. Skvortsova, E.A. Pavlovskaya, V.N. Obolenskiy.

В ходе исследования были выявлены следующие сложности:

1. Потеря герметичности: адгезивное пленочное покрытие теряло свои клеящие свой­ства в течение первого часа после фиксации. Для решения этой проблемы была применена паста Абуцел, которая улучшала адгезию пленки к коже. Паста наносилась тонким слоем и распределялась равномерно по периметру раны, создавая гладкую поверхность для лучшего прилегания пленки.
2. Различия в эффективности в зависимости от локализации: на конечностях повязка сохраняла герметичность до 72 часов, в то время как на области живота — не более 24 часов. Это может быть связано с различиями в подвижности тканей и интенсивности экссудации в разных анатомических областях.

Применение метода ЛОД в лечении ран у лошадей показало перспективные результаты. Наблюдалось ускорение формирования грануляционной ткани и эпителизации раневой поверхности (рис. 7–12). Средняя скорость заживления ран при использовании ЛОД была на 30…40 % выше по сравнению с лечением с применением антисептических и антибактериальных препаратов (рис. 13–15).

Однако исследование выявило ряд технических проблем, требующих дальнейшего изучения и оптимизации:

1. Длительность герметизации: необходимость ежедневной перевязки, особенно в области живота, снижает эффективность терапии и увеличивает стресс для животного. Требуется разработка более стойких адгезивных материалов или альтернативных методов фиксации, которые позволят увеличить срок между перевязками.
2. Особенности топографии: различия в эффективности метода в зависимости от локализации раны и морфофункциональных особенностей затронутых тканей указывают на необходимость разработки специфических протоколов применения ЛОД для разных областей тела лошади.
3. Оптимизация параметров терапии: необходимо провести дополнительные исследования для разработки оптимальных уровней отрицательного давления и режимов его применения (постоянный или переменный) для различных типов ран у лошадей.

 Рис. 7. До применения ЛОД
Источник: выполнено А.А. Скворцовой, Е.А. Павловской, В.Н. Оболенским.
Fig. 7. Before using LNP
Source: compiled by A.A. Skvortsova, E.A. Pavlovskaya, V.N. Obolenskiy.

Рис. 8. Через 14 дней после ЛОД
Источник: выполнено А.А. Скворцовой, Е.А. Павловской, В.Н. Оболенским.
Fig. 8. 14 days after LNP
Source: compiled by A.A. Skvortsova, E.A. Pavlovskaya, V.N. Obolenskiy.

Рис. 9. Через 30 дней после ЛОД
Источник: выполнено А.А. Скворцовой, Е.А. Павловской, В.Н. Оболенским.
Fig. 9. 30 days after LNP
Source: compiled by A.A. Skvortsova, E.A. Pavlovskaya, V.N. Obolenskiy.

 Рис. 10. Рана на конечности до применения ЛОД
Источник: выполнено А.А. Скворцовой, Е.А. Павловской, В.Н. Оболенским.
Fig. 10. Wound on a limb before applying LNP
Source: compiled by A.A. Skvortsova, E.A. Pavlovskaya, V.N. Obolenskiy.

Рис. 11. Повязка для метода ЛОД
Источник: выполнено А.А. Скворцовой, Е.А. Павловской, В.Н. Оболенским.
Fig. 11. Bandage for LNP
Source: compiled by A.A. Skvortsova, E.A. Pavlovskaya,   V.N. Obolenskiy.

 Рис. 12. Состояние раны через 14 дней после применения ЛОД, сразу после снятия повязки
Источник: выполнено А.А. Скворцовой, Е.А. Павловской, В.Н. Оболенским.
Fig. 12. The condition of the wound 14 days after the use of LNP, immediately after removing the dressing
Source: compiled by A.A. Skvortsova, E.A. Pavlovskaya, V.N. Obolenskiy.

Рис. 13. Состояние раны и расхождение швов на 7 день
Источник: выполнено А.А. Скворцовой, Е.А. Павловской, В.Н. Оболенским.
Fig. 13. Condition of wounds and suture dehiscence on day 7
Source: compiled by A.A. Skvortsova, E.A. Pavlovskaya, V.N. Obolenskiy.

 Рис. 14. Состояние раны на 14 день
Источник: выполнено А.А. Скворцовой, Е.А. Пав-ловской, В.Н. Оболенским.
Fig. 14. Condition of the wound on day 14
Source: compiled by A.A. Skvortsova, E.A. Pavlovskaya, V.N. Obolenskiy.

 Рис. 15. Состояние раны на 30 день
Источник: выполнено А.А. Скворцовой, Е.А. Пав-ловской, В.Н. Оболенским.
Fig. 15. Condition of the wound on day 30
Source: compiled by A.A. Skvortsova, E.A. Pavlovskaya, V.N. Obolenskiy.

Заключение

Метод локального отрицательного давления вызывает значительный интерес в ветеринарной медицине, особенно в контексте лечения ран у лошадей. Однако, для его успешного внедрения в клиническую практику требуется дальнейшее изучение метода и адаптация крепления конструкции к конкретному участку тела. Необходимо сосредоточиться на разработке более эффективных материалов для герметизации ран. Такие материалы должны учитывать анатомические и физиологические особенности различных областей тела лошадей, что позволит обеспечить более надежный и долговременный контакт конструкции с раневой поверхностью, что, в свою очередь, может способствовать ускорению процессов заживления и снижению риска инфекционных осложнений. Также требуется проведение исследований, направленных на определение оптимальных параметров терапии для различных типов ран. Это включает в себя изучение таких факторов, как продолжительность и интенсивность воздействия.

Важно отметить, что метод ЛОД наиболее целесообразно применять в первую фазу раневого процесса для удаления избыточного экссудата, снижения воспалительной реакции и стимуляции возникновения грануляции. Использование данного метода рекомендовано в условиях ветеринарных клиник, где имеется необходимое оборудование и возможность обеспечить надлежащий контроль за процессом лечения. Использование данного метода в условиях конюшни представляется менее возможным из-за сложности поддержания необходимого уровня стерильности, отсутствия специализированного оборудования и затрудненности регулярного мониторинга состояния раны. В клинических условиях метод может продемонстрировать максимальную эффективность благодаря возможности строгого соблюдения протокола лечения и оперативного реагирования на возможные осложнения.

Применение ЛОД у лошадей с осложненными послеоперационными и посттравматическими ранами способствует более быстрому купированию воспалительного процесса, стимуляции регенерации тканей и снижению риска развития гнойно-­септических осложнений. Данные выводы подтверждены результатами цитологических и микробиологических исследований, что делает ЛОД перспективным методом лечения ран у лошадей в клинической практике.

Таким образом, дальнейшие исследования и разработки в этой области представляют собой важное направление для повышения уровня ветеринарной помощи, особенно в аспекте стационарного лечения лошадей в специализированных клиниках. Внедрение метода ЛОД в клиническую практику может значительно улучшить качество лечения ран у лошадей, обеспечивая более быстрые и надежные результаты при условии соблюдения всех необходимых требований к проведению терапии.

Об авторах

Анастасия Алексеевна Скворцова

Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА им. К.И. Скрябина

Автор, ответственный за переписку.
Email: anastasiaeqvet@gmail.com
ORCID iD: 0009-0001-8513-9946
SPIN-код: 6454-5819

ассистент кафедры ветеринарной хирургии

Российская Федерация, 109472, г. Москва, ул. Академика Скрябина, д. 23

Екатерина Андреевна Павловская

Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА им. К.И. Скрябина

Email: vetgroomer@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-8768-5086
SPIN-код: 4663-2225

кандидат биологических наук, доцент кафедры ветеринарной хирургии

Российская Федерация, 109472, г. Москва, ул. Академика Скрябина, д. 23

Владимир Николаевич Оболенский

Филиал № 1 ГБУЗ ГКБ им. В.П. Демихова; Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова Минздрава России

Email: gkb13@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1276-5484
SPIN-код: 5843-2934

кандидат медицинских наук, врач хирург и травматолог-ортопед, заведующий центром гнойной хирургии, филиал № 1 ГБУЗ ГКБ им. В.П. Демихова ДЗМ; доцент кафедры общей хирургии л/ф, Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова

115280, Российская Федерация, г. Москва, ул. Велозаводская, д. 1/1; Российская Федерация, 117997, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1

Список литературы

Дополнительные файлы