Особенности возникновения, распространения, диагностики, патогенеза и лечения инфекционного перитонита кошек
- Авторы: Лаптев С.В.1, Селина М.В.1
-
Учреждения:
- Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии — МВА имени К.И. Скрябина
- Выпуск: Том 20, № 4 (2025)
- Страницы: 635-644
- Раздел: Ветеринария
- URL: https://agrojournal.rudn.ru/agronomy/article/view/20272
- DOI: https://doi.org/10.22363/2312-797X-2025-20-4-635-644
- EDN: https://elibrary.ru/CJMQTQ
- ID: 20272
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Представлено обобщение современных данных о распространении, патогенезе, диагностике и лечении инфекционного перитонита кошек (FIP), вызываемого коронавирусом кошек (FCoV). Коронавирусы характеризуются высокой частотой мутаций и способностью к межвидовой передаче, что объясняет их широкое распространение у домашних и диких животных. Установлено, что FCoV выявляется у значительной части популяции кошек, однако инфекционный перитонит развивается лишь у приблизительно 10 % инфицированных животных вследствие мутаций вируса внутри организма хозяина. Заболевание сопровождается системным воспалительным процессом, полиорганной недостаточностью и высокой летальностью. Рассмотрены механизмы передачи коронавирусов, включая роль летучих мышей как резервуара α- и β-CoV, а также подтверждена возможность репликации SARS-CoV-2 в организме кошек и собак, что свидетельствует о потенциальных зоонозных рисках. Особое внимание уделено особенностям лабораторной диагностики, включая использование методов ПЦР, ИФА, а также выявлению характерных биохимических и морфологических изменений. Обобщены данные о поражении различных органов и систем, в частности о кардиоваскулярных осложнениях, включая миокардит, который может развиваться как при прямом инфицировании миокарда коронавирусом, так и в результате системной воспалительной реакции или цитокинового шторма. Проанализированы современные терапевтические подходы, включая противовирусные и иммуномодулирующие схемы. Наибольший интерес представляют нуклеозидные аналоги, в частности GS-441524, обладающий способностью прерывать репликацию вирусной РНК. Отмечено появление российских препаратов, таких как КоронаКэт, Melon-V. Однако сохраняются риски формирования резистентных штаммов. Таким образом, инфекционный перитонит кошек остается одной из наиболее актуальных проблем ветеринарной медицины. Систематизация данных подчеркивает необходимость дальнейших исследований, направленных на уточнение патогенеза, совершенствование диагностических критериев и разработку эффективных противовирусных средств.
Полный текст
Введение
Коронавирусы кошек (FCoVs) — это оболочечные РНК-вирусы, принадлежащие к семейству Coronaviridae рода Alphacoronavirus. FCoVs эндемичны для домашних кошек. В Российской Федерации коронавирусная инфекция впервые была выявлена в 1990‑х гг. у чистокровных животных [1]. Инфекционный вирусный перитонит кошек (FIP) — это иммунозависимое инфекционное заболевание, приводящее к летальному исходу [2–4]. Болеют преимущественно молодые и старые животные. Заболевание может протекать в экссудативной и гранулематозной формах, в патологический процесс помимо печени и почек вовлекаются также сердце, глаза и мозг. Поврежденные вирусом макрофаги утрачивают способность экспрессировать вирусные антигены на своей поверхности, в результате чего специфические антитела не могут идентифицировать пораженные клетки. Наиболее информативно иммуногистохимическое исследование [5].
Различают два серотипа коронавируса: первый (кошачий коронавирус FECV) вызывает коронавирусный энтерит у кошек, второй (вирус инфекционного перитонита кошек FIPV) вызывает инфекционный вирусный перитонит у кошек с высоким уровнем смертности [1]. Доказано, что FIPV является мутацией FECV, которая возникает в 8…10 % случаев [2, 6]. Иногда безвредные серотипы могут приводить к смертельным мутациям [7].
Цель обзора — комплексное исследование инфекционного перитонита кошек при коронавирусной инфекции с охватом широкого спектра аспектов, включая эпизоотологию, методы выявления, механизмы развития заболевания, профилактические меры, терапевтические подходы и прогнозирование исходов болезни.
Материалы и методы исследования
В рамках данного исследования были задействованы теоретические подходы, включая изучение и систематизацию актуальных публикаций российских и зарубежных исследователей. Поиск соответствующих материалов производился с использованием электронных баз данных, таких как Google Scholar, CrossRef, eLIBRARY.RU и cyberleninka.ru, по ключевым словам «инфекционный перитонит кошек» и «FIP» за 2018–2025 гг. Источники отбирались в соответствии с содержанием в них актуальной информации об эпизоотической ситуации, диагностических подходах, патогенетических механизмах, а также стратегиях профилактики и лечения указанного заболевания.
Результаты исследования и обсуждение
FCoVs обнаружены у домашних и диких кошек, а также у других животных с респираторным синдромом [2, 4, 8, 9]. Мыши и хорьки восприимчивы к инфекции [2]. Коронавирусы (CoV) способны к рекомбинации, и большинство инфекций CoV являются зоонозными [10]. Способность адаптироваться к новым хозяевам объясняется высокой частотой мутаций, из-за низкой надежности вирусной РНК-полимеразы [11]. Летучие мыши являются резервуаром для α- и β-коронавирусов [12], которые встречаются у людей, собак, кошек, свиней, мышей, крыс, лошадей и крупного рогатого скота [13–16.].
Вирус SARS-CoV‑2 может размножаться в организме кошек и собак [17–22] и передаваться при контакте с людьми, больными COVID‑19. PHK SARS-CoV‑2 выделяется из слизистой полости рта и носа, а также шерсти кошек, но анализы ОТ-ПЦР и ИФА не всегда дают положительный результат [23, 24]. Внешняя оценка качества по тестированию РНК вируса SARS-CoV‑2 методом ПЦР выявила основные ошибки, допускаемые в ходе исследований [25]. Также были обобщены структурные особенности коронавируса SARS-CoV‑2, описаны клеточные механизмы, которые делают некоторых пациентов наиболее восприимчивыми к инфекции [26].
Распространенность FCoV-инфекции среди кошек достигает 90 %. Вирус выделяется с калом и передается фекально-оральным путем [27, 28]. В 10 % случаев развивается инфекционный перитонит у кошек (FIP) [29], когда высоковирулентные FCoV возникают заново в результате мутации внутри особи [30], которая приводит к системной инфекции [31], появлению различных клинических признаков и последующей гибели животного в течение восьми-девяти дней после постановки диагноза [32]. Синдром системной воспалительной реакции, полиорганная недостаточность и развитие симптомов сепсиса делают некоторых пациентов более восприимчивыми к инфекции [33–35].
Вакцин для профилактики FCoV не существует. Инфекционный перитонит кошек (FIP), вызываемый коронавирусом кошек (FCoV), без лечения приводит к летальному исходу [36]. Предлагались различные противовирусные и иммуномодулирующие схемы лечения FIP, которые не были признаны эффективными [37]. Однако нелицензированный аналог нуклеозида GS‑441524 перспективен для кошек с FIP [38–42] и обладает свойством прерывать цепь РНК вируса. На российском рынке лекарственных средств для лечения FIP организован выпуск препарата КоронаКэт, основанный на нуклеозидном аналоге GS‑441524, а также апробируется препарат Melon-V, но есть опасения по поводу появления мутантов [43].
У кошек с FIP наблюдается повышенная транскрипция воспалительных цитокинов в сердечной мышце и печени, хотя этот показатель в сердце был ниже, чем в печени, что свидетельствует о более позднем и реактивном вовлечении миокарда в процесс заболевания [44]. Могут развиваться выпоты в полости тела, пиогранулематозные поражения различных органов, включая мозг и глаза [45], дерматологические проявления [46], а также поражения миокарда или миокардит [41, 47, 48]. Миокардит может проявляться различными клиническими симптомами, включая систолическую и/или диастолическую дисфункцию, утолщение стенок желудочков и аномальные движения стенок, перикардиальный выпот и электрокардиографические изменения [49]. Воспаление миокарда может быть вызвано инфекцией Streptococcus suis [50], Bartonella henselae [51, 52] или Salmonella typhimurium [53], а также паразитами, такими как Hepatozoon silvestris [54], Sarcocystis felis [55] и Toxoplasma gondii [56, 57], а также неинфекционными причинами. SARS-CoV‑2 может вызывать миокардит у людей (связан с воспалительной реакцией и цитокиновым штормом [58]) и сердечную недостаточностью у кошек [59, 60]. Однако неясно, вызывал ли вирус миокардит напрямую или же в результате мультисистемного воспалительного синдрома, как это было описано у людей [61]. FCoV обнаружен при вскрытии в миокарде кошек [59] с диффузным гранулематозным воспалением сердца при FIP [62]. Модифицированные критерии Дюка для диагностики инфекционного эндокардита у людей [63], собак [64] и кошек [57] включают cTnI >1,0 нг/мл и/или обнаружение вируса. Вторичные критерии включают лихорадку, сердечные шумы, желудочковую аритмию, снижение систолической функции левого желудочка, гетерогенность миокарда левого желудочка, перикардиальный выпот и лабораторные изменения, такие как воспалительная лейкограмма, анемия, тромбоцитопения и гипоальбуминемия. Миокардит предполагается при наличии двух основных критериев или одного основного критерия и трех вторичных критериев [65]. Миокардит может быть важным симптомом FIP и эффективно лечится антивирусными препаратами в сочетании с симптоматическим лечением сердечно-сосудистыми препаратами. Эндомиокардиальная биопсия считается золотым стандартом диагностики миокардита у людей [66]. Однако, поскольку эта процедура является очень инвазивной для кошек, диагноз часто ставится на основании анамнеза и клинических данных в сочетании с лабораторными показателями, такими как тропонин I [67], ЭКГ и эхокардиография. Некоторые лабораторные изменения, такие как повышение уровня белков острой фазы и лихорадка, могут быть связаны с самим FIP [45, 68].
Заключение
Коронавирусы характеризуются высокой частотой мутаций и способностью к межвидовой передаче, что обусловливает их широкое распространение среди домашних и диких животных. FCoV — основной этиологический агент FIP, который развивается приблизительно у 10 % инфицированных особей вследствие мутаций вируса в организме хозяина. Также заболевание сопровождается системным воспалительным процессом, полиорганными поражениями и высокой летальностью.
Специфические вакцины для профилактики и лечения FIP отсутствуют. Наибольшую перспективу демонстрируют нуклеозидные аналоги, в частности GS‑441524, применение которых в ряде случаев приводит к клиническому выздоровлению, однако сохраняются риски формирования резистентных вариантов вируса. Особую значимость имеют осложнения со стороны сердечно-сосудистой системы, включая миокардит, который может формироваться как следствие прямого воздействия коронавирусной инфекции, так и в рамках системной воспалительной реакции. Поражение миокарда у кошек с FIP сопровождается характерными клиническими и морфологическими изменениями, однако диагностика данного состояния затруднена из-за ограничений в применении инвазивных методов. В большинстве случаев она основывается на клинических данных, лабораторных показателях, а также результатах инструментальных исследований.
Таким образом, FIP остается актуальной проблемой ветеринарной медицины. Дальнейшие исследования направлены на уточнение патогенеза заболевания, разработку надежных диагностических критериев и создание эффективных противовирусных средств, позволяющих снизить летальность и контролировать распространение FIP.
Об авторах
Сергей Владимирович Лаптев
Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии — МВА имени К.И. Скрябина
Email: x9131078824@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-3023-6976
SPIN-код: 4867-7430
кандидат биологических наук, доцент, доцент кафедры эпизоотологии и организации ветеринарного дела
Российская Федерация, 109472, г. Москва, ул. Академика Скрябина, д. 23Марина Викторовна Селина
Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии — МВА имени К.И. Скрябина
Автор, ответственный за переписку.
Email: project@mgavm.ru
ORCID iD: 0000-0001-8201-1042
SPIN-код: 1372-2660
кандидат педагогических наук, доцент кафедры экономики и цифровизации в АПК
Российская Федерация, 109472, г. Москва, ул. Академика Скрябина, д. 23Список литературы
- Петрова О.Ю., Косяев Н.И., Ефимова И.О., Можаева А.А. Инфекционный перитонит кошек // Аграрная наука — сельскому хозяйству. Барнаул : АлтГАУ, 2018. С. 422–423. EDN: YWLLDE
- Барсегян Л.С., Сухарев О.И., Куликов Е.В. Инфекционный вирусный перитонит кошек (обзор литературы) // Актуальные вопросы ветеринарной биологии. 2015. № 1 (25). С. 16–23. EDN: TLXQFZ
- Иванова Л.Е., Кравченко В.М. Клиническое значение анемии при инфекционном перитоните кошек // Вестник научно-технического творчества молодежи Кубанского ГАУ. 2018. № 4. С. 26–28. EDN: QNQIZL
- Ленская Е.С., Бугуев Е.Г. Патоморфология коронавирусной инфекции у кошек // Актуальные проблемы сельского хозяйства горных территорий. Горно-Алтайск, 2021. С. 161–165. EDN: TYKGSF
- Пальцева Е.Д., Плешакова В.И. Коронавирусы в популяции домашних кошек // Вестник Омского государственного аграрного университета. 2022. № 1 (45). С. 94–101. doi: 10.48136/2222-0364_2022_1_94 EDN: BBEVCT
- Михайловская П.А., Кондрашкина К.М., Симонова Е.И., Рысцова Е.О. Новый подход в лечении вирусного перитонита кошек // Бюллетень науки и практики. 2019. Т. 5. № 5. С. 210–220. doi: 10.33619/2414-2948/42/29 EDN: TRGYXL
- Костюкова Е.С., Бакирова А.А., Порошин К.В. Инфекционный перитонит семейства кошачьих // Электронный научный журнал. 2016. № 12–1 (15). С. 40–42. EDN: XHJWPN
- Грибова И.В., Петрова О.Г. Инфекционный перитонит кошек // Агропродовольственная политика России. 2012. № 10. С. 60–63. EDN: VOBPGH
- Кравченко В.М., Иванова Л.Е. Эпизоотологические особенности вирусного перитонита кошек // Научное обеспечение агропромышленного комплекса. Краснодар : Кубанский ГАУ им. И.Т. Трубилина, 2019. С. 448–449. EDN: OIQMIV
- Ye ZW, Yuan S, Yuen KS, Fung SY, Chan CP, Jin DY. Zoonotic origins of human coronaviruses. International Journal of Biological Sciences. 2020;16(10):1686–97. doi: 10.7150/ijbs.45472
- Drake JW, Holland JJ. Mutation rates among RNA viruses. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 1999;96(24):13910–13913. doi: 10.1073/pnas.96.24.13910
- Woo PC, Lau SK, Lam CS, Tsang AK, Hui SW, Fan RY, et al. Discovery of seven novel mammalian and avian coronaviruses in the genus Deltacoronavirus supports bat coronaviruses as the gene source of Alphacoronavirus and Betacoronavirus and avian coronaviruses as the gene source of Gammacoronavirus and Deltacoronavirus. Journal of Virology. 2012;86(7):3995–4008. doi: 10.1128/jvi.06540-11
- Bourgarel M, Pfukenyi DM, Boué V, Chidoti F, Mazarati JB, Grosbois V, et al. Circulation of Alphacoronavirus, Betacoronavirus and Paramyxovirus in Hipposideros bat species in Zimbabwe. Infection, Genetics and Evolution. 2018;58:253–257. doi: 10.1016/j.meegid.2018.01.007
- Monchatre-Leroy E, Boué F, Boucher JM, Renault C, Sabatier P, Decors A, et al. Identification of Alpha and Beta Coronavirus in wildlife species in France: bats, rodents, rabbits, and hedgehogs. Viruses. 2017;9(12):364. doi: 10.3390/v9120364
- Pan Y, Tian X, Qin P, Wang B, Zhao P, Yang YL, et al. Discovery of a novel swine enteric alphacoronavirus (SeACoV) in southern China. Veterinary microbiology. 2017;211:15–21. doi: 10.1016/j.vetmic.2017.09.003
- Wan Z, Zhang Y, He Z, Zheng S, Ma C, Wang J, et al. A melting curve-based multiplex RT-qPCR assay for simultaneous detection of four human coronaviruses. International Journal of Molecular Sciences. 2016;17(11):1880. doi: 10.3390/ijms17111880
- Fritz M, Rosolen B, Krafft E, Panseri S, Lecollinet S, Pozzi N, et al. High prevalence of SARS-CoV-2 antibodies in pets from COVID-19+ households. One Health. 2021;11:100192. doi: 10.1016/j.onehlt.2020.100192
- Hamer SA, Pauvolid-Corrêa A, Zecca IB, Davila E, Auckland LD, Roundy CM, et al. Natural SARS-CoV-2 infections, including virus isolation, among serially tested cats and dogs in households with confirmed human COVID-19 cases in Texas, USA. Viruses. 2020;13(5):938. doi: 10.3390/v13050938
- Michelitsch A, Hoffmann D, Wernike K, Lange E, Beer M, Renneker S. Occurrence of antibodies against SARS-CoV-2 in the domestic cat population of Germany. Vaccines. 2020;8(4):772. doi: 10.3390/vaccines8040772
- Patterson EI, Elia G, Grassi A, Giordano A, Desario C, Medardo M, et al. Evidence of exposure to SARS-CoV-2 in cats and dogs from households in Italy. Nature Communications. 2020;11(1):6231. doi: 10.1038/s41467-020-20097-0
- Shi J, Wen Z, Zhong G, Yang H, Wang C, Huang B, et al. Susceptibility of ferrets, cats, dogs, and other domesticated animals to SARS-coronavirus 2. Science. 2020;368(6494):1016–1020. doi: 10.1126/science.abb7015
- Zhang Q, Zhang H, Gao J, Huang K, Yang Y, Hui X, et al. A serological survey of SARS-CoV-2 in cats in Wuhan. Emerging Microbes and Infections. 2020;9(1):2013–2019. doi: 10.1080/22221751.2020.1817796
- Hosie MJ, Hofmann-Lehmann R, Hartmann K, Egberink H, Truyen U, Baechlein C, et al. Anthropogenic infection of cats during the 2020 COVID-19 pandemic. Viruses. 2021;13(2):185. doi: 10.3390/v13020185
- Temmam S, Barbarino A, Maso D, Behillil S, Enouf V, Huon C, et al. Absence of SARS-CoV-2 infection in cats and dogs in close contact with a cluster of COVID-19 patients in a veterinary campus. One Health. 2020;10:100164. doi: 10.1016/j.onehlt.2020.100164
- Мезенцева Н.И., Лаптев С.В. Разработка программ межлабораторных сличительных испытаний и организация внешней оценки качества ПЦР-диагностики COVID-19 // Справочник заведующего КДЛ. 2020. № 12. С. 6–10. EDN: ZQJKSC
- Лаптев С.В., Мезенцева Н.И. Клеточные и гуморальные механизмы защиты при коронавирусной инфекции // Справочник заведующего КДЛ. 2021. № 5. С. 34–43. EDN: PTCMFV
- Pedersen NC. A review of feline infectious peritonitis virus infection: 1963–2008. Journal of Feline Medicine and Surgery. 2009;11(4):225–258. doi: 10.1016/j.jfms.2008.09.008
- Pedersen NC, Allen CE, Lyons LA. Pathogenesis of feline enteric coronavirus infection. Journal of Feline Medicine and Surgery. 2008;10(6):529–541. doi: 10.1016/j.jfms.2008.02.006
- Tasker S, Addie DD, Egberink H, Belák S, Boucraut-Baralon C, Frymus T, et al. Feline infectious peritonitis: European Advisory Board on Cat Diseases guidelines. Viruses. 2023;15(9):1847. doi: 10.3390/v15091847
- Vennema H, Poland A, Foley J, Pedersen NC. Feline infectious peritonitis viruses arise by mutation from endemic feline enteric coronaviruses. Virology. 1998;243(1):150–157. doi: 10.1006/viro.1998.9045
- Malbon AJ, Michalopoulou E, Meli ML, Schwartz A, Bounous DI, Lutz H, et al. Colony stimulating factors in early feline infectious peritonitis virus infection of monocytes and in end stage feline infectious peritonitis: a combined in vivo and in vitro approach. Pathogens. 2020;9(11):893. doi: 10.3390/pathogens9110893
- Fischer Y, Ritz S, Weber K, Sauter-Louis C, Hartmann K. Randomized, placebo-controlled study of the effect of propentofylline on survival time and quality of life of cats with feline infectious peritonitis. Journal of Veterinary Internal Medicine. 2011;25(6):1270–1276. doi: 10.1111/j.1939-1676.2011.00806.x
- Лаптев С.В., Татарникова Н.А., Сидорова К.А., Новикова О.В. Патогенез и маркеры сепсиса // Известия сельскохозяйственной науки Тавриды. 2023. № 35 (198). С. 182–197. EDN: OBFCRQ
- Пигина С.Ю., Лаптев С.В., Татарникова Н.А. Особенности патогенеза, диагностика и прогноз исхода септических заболеваний мелких домашних животных // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. 2024. № 10. С. 12–22. doi: 10.36871/vet.zoo.bio.202410002 EDN: FEEUCL
- Лаптев С.В., Пименов Н.В., Марзанова С.Н., Пермякова К.Ю., Иванникова Р.Ф. Эвристические подходы к оценкам риска и прогнозам развития сепсиса у собак // Международный вестник ветеринарии. 2023. № 3. С. 35–50. doi: 10.52419/issn2072-2419.2023.3.35 EDN: TNDYPT
- Sparkes AH, Gruffydd-Jones TJ, Harbour DA. Feline infectious peritonitis: a review of clinicopathological changes in 65 cases, and a critical assessment of their diagnostic value. Veterinary Record. 1991;129(10):209–212. doi: 10.1136/vr.129.10.209
- Delaplace M, Huet H, Gambino A, Le Poder S. Feline coronavirus antivirals: a review. Pathogens. 2021;10(9):1150. doi: 10.3390/pathogens10091150
- Addie DD, Covell-Ritchie J, Jarrett O, Fosbery M. Rapid resolution of non-effusive feline infectious peritonitis uveitis with an oral adenosine nucleoside analogue and feline interferon omega. Viruses. 2020;12(11):1216. doi: 10.3390/v12111216
- Dickinson PJ, Bannasch M, Thomasy SM, Murthy VD, Vernau KM, Liepnieks M, et al. Antiviral treatment using the adenosine nucleoside analogue GS-441524 in cats with clinically diagnosed neurological feline infectious peritonitis. Journal of Veterinary Internal Medicine. 2020;34(4):1587–1593. doi: 10.1111/jvim.15780
- Jones S, Novicoff W, Nadeau J, Evans S, Stuetzer B, Bannasch M. Unlicensed GS-441524-like antiviral therapy can be effective for at-home treatment of feline infectious peritonitis. Animals (Basel). 2021;11(8):2257. doi: 10.3390/ani11082257
- Murphy B, Perron M, Murakami E, Bauer L, Park Y, Knight V, et al. The nucleoside analog GS-441524 strongly inhibits feline infectious peritonitis virus in tissue culture and experimental cat infection studies. Veterinary Microbiology. 2018;219:226–233. doi: 10.1016/j.vetmic.2018.04.026
- Zuzzi-Krebitz AM, Buchta K, Bergmann M, Schlottau K, Hoffmann D, Beer M, et al. Short treatment of 42 days with oral GS-441524 results in equal efficacy as the recommended 84-day treatment in cats suffering from feline infectious peritonitis with effusion: a prospective randomized controlled study. Viruses. 2024;16(7):1144. doi: 10.3390/v16071144
- Воскресенский А.А. Особенности клинической картины и современные подходы к лечению коронавирусного энтерита у кошек (обзорная статья) // Аграрный вестник Верхневолжья. 2024. № 1 (46). С. 38–42. doi: 10.35523/2307-5872-2024-46-1-38-42 EDN: MXMVUW
- Malbon AJ, Fonfara S, Meli ML, Willi B, Hartmann K, Lutz H. Feline infectious peritonitis as a systemic inflammatory disease: contribution of liver and heart to the pathogenesis. Viruses. 2019;11(12):1144. doi: 10.3390/v11121144
- Hartmann K. Feline infectious peritonitis. The Veterinary clinics of North America. Small Animal Practice. 2005;35(1):39–79. doi: 10.1016/j.cvsm.2004.10.011
- Bauer BS, Kerr ME, Sandmeyer LS. Positive immunostaining for feline infectious peritonitis (FIP) in a Sphinx cat with cutaneous lesions and bilateral panuveitis. Veterinary Ophthalmology. 2013;16(Suppl 1):160–163. doi: 10.1111/vop.12044
- Kotsyumbas GI, Khalaniia MR. Pathomorphology of cats with myocardial infectious peritonitis. Scientific Messenger of LNU of Veterinary Medicine and Biotechnologies. 2019;21:177–184. doi: 10.32718/nvlvet9631
- Repyak K, Atiee G, Cook A, Chapman M, Lee H, Burgess S, et al. Thoracic radiographic findings in cats with feline infectious peritonitis. Journal of Feline Medicine and Surgery. 2025;27(2):1098612X241309823. doi: 10.1177/1098612X241309823
- Lampejo T, Durkin SM, Bhatt N, Guttmann O. Acute myocarditis: aetiology, diagnosis and management. Clinical medicine (Lond). 2021;21(5): e505–510. doi: 10.7861/clinmed.2021-0121
- Wood J, Reagan KL, Gunther-Harrington C, Sykes JE. Identification of Streptococcus suis in a cat with endomyocarditis. Journal of Feline Medicine and Surgery Open Reports. 2021;7(1):20551169211012346. doi: 10.1177/20551169211012346
- Joseph JL, Oxford EM, Santilli RA. Transient myocardial thickening in a Bartonella henselae–positive cat. Journal of Veterinary Cardiology. 2018;20(3):198–203. doi: 10.1016/j.jvc.2018.04.003
- Varanat M, Broadhurst J, Linder KE, Maggi RG, Breitschwerdt EB. Identification of Bartonella henselae in 2 cats with pyogranulomatous myocarditis and diaphragmatic myositis. Veterinary Pathology. 2012;49(4):608–611. doi: 10.1177/0300985811404709
- Vercelli A, Lo Cicero E, Pazzini L. Salmonella typhimurium endocarditis and myocarditis in a cat. Case Reports in Veterinary Medicine. 2019;2019:7390530. doi: 10.1155/2019/7390530
- Kegler K, Nufer U, Alic A, Posthaus H, Olias P, Basso W. Fatal infection with emerging apicomplexan parasite Hepatozoon silvestris in a domestic cat. Parasites Vectors. 2018;11:428. doi: 10.1186/s13071–018–2992–4
- Elsheikha HM, Kennedy FA, Murphy AJ, et al. Sarcocystosis of Sarcocystis felis in cats. Journal of the Egyptian Society of Parasitology. 2006;36:1071–1085.
- Romito G, Fracassi F, Cipone M. Transient myocardial thickening associated with acute myocardial injury and congestive heart failure in two Toxoplasma gondii-positive cats. Journal of Feline Medicine and Surgery Open Reports. 2022;8(2):20551169221131266. doi: 10.1177/20551169221131266
- Simpson KE, Devine BC, Gunn-Moore D. Suspected Toxoplasma-associated myocarditis in a cat. Journal of Feline Medicine and Surgery. 2005;7(3):203–208. doi: 10.1016/j.jfms.2004.08.004
- Shu H, Zhao C, Wang DW. Understanding COVID-19-related myocarditis: pathophysiology, diagnosis, and treatment strategies. Cardiology plus. 2023;8(2):72–81. doi: 10.1097/CP9.0000000000000046
- Ernandes MA, Cantoni AM, Armando F, Corradi A, Ressel L, Tamborini A. Feline coronavirus-associated myocarditis in a domestic longhair cat. Journal of Feline Medicine and Surgery Open Reports. 2019;5(1):2055116919879256. doi: 10.1177/2055116919879256
- Ferasin L, Fritz M, Ferasin H, Becquart P, Corbet S, Ar Gouilh M, et al. Infection with SARS-CoV-2 variant B.1.1.7 detected in a group of dogs and cats with suspected myocarditis. Veterinary Record. 2021;189(9): e944. doi: 10.1002/vetr.944
- Morris SB, Schwartz NG, Patel P, Abbo L, Beauchamps L, Balan S, et al. Case series of multisystem inflammatory syndrome in adults associated with SARS-CoV-2 infection — United Kingdom and United States, March–August 2020. MMWR. Morbidity and Mortality Weekly Report. 2020;69(40):1450–1456. doi: 10.15585/mmwr.mm6940e1
- Yoshida T, Ichikawa N, Koike M, Saito M, Shimizu H. Two feline cases of dilated cardiomyopathy-like disease caused by feline infectious peritonitis virus. Journal of Animal Clinical Medicine. 2016;25:148–152. doi: 10.11252/dobutsurinshoigaku.25.148
- Li JS, Sexton DJ, Mick N, Nettles R, Fowler VG Jr, Ryan T, et al. Proposed modifications to the Duke criteria for the diagnosis of infective endocarditis. Clinical Infectious Diseases. 2000;30(4):633–638. doi: 10.1086/313753
- MacDonald KA. Infective endocarditis in dogs: diagnosis and therapy. Veterinary clinics of North America. Small Animal Practice. 2010;40(3):665–684. doi: 10.1016/j.cvsm.2010.03.010
- Lakhdhir S, Viall A, Alloway E, Bommer K, Fulcher M, Clary L, et al. Clinical presentation, cardiovascular findings, etiology, and outcome of myocarditis in dogs: 64 cases with presumptive antemortem diagnosis and 137 cases with postmortem diagnosis only (2004–2017). Journal of Veterinary Cardiology. 2020;30:44–56. doi: 10.1016/j.jvc.2020.05.003
- Caforio ALP, Pankuweit S, Arbustini E, Basso C, Gimeno-Blanes J, Felix SB, et al. Current state of knowledge on aetiology, diagnosis, management, and therapy of myocarditis: a position statement of the European Society of Cardiology Working Group on Myocardial and Pericardial Diseases. European Heart Journal. 2013;34(33):2636–2648. doi: 10.1093/eurheartj/eht210
- Langhorn R, Willesen JL. Cardiac troponins in dogs and cats. Journal of Veterinary Internal Medicine. 2015;30(1):36–50. doi: 10.1111/jvim.13801
- Thayer V, Gogolski S, Felten S, Lappin M, Pedersen N, Hartmann K, et al. 2022 AAFP/EveryCat Feline Infectious Peritonitis diagnosis guidelines. Journal of Feline Medicine and Surgery. 2022;24(10):905–933. doi: 10.1177/1098612X221118761
Дополнительные файлы










