Features of the occurrence, spread, diagnosis, pathogenesis and treatment of infectious feline peritonitis

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

This study presents a synthesis of current data on the prevalence, pathogenesis, diagnosis, and treatment of feline infectious peritonitis (FIP), caused by feline coronavirus (FCoV). Coronaviruses are characterized by a high mutation rate and the ability to cross species barriers, which explains their wide distribution among domestic and wild animals. It has been established that FCoV is detected in a significant proportion of the feline population; however, infectious peritonitis develops in only about 10 % of infected animals as a result of viral mutations occurring within the host organism. The disease is accompanied by systemic inflammatory processes, multiple organ failure, and high mortality. The study examines the mechanisms of coronavirus transmission, including the role of bats as reservoirs of α- and β-­CoVs, and confirms the ability of SARS-CoV-2 to replicate in cats and dogs, indicating potential zoonotic risks. Particular attention is given to laboratory diagnostic approaches, including PCR, ELISA, and the detection of characteristic biochemical and morphological changes. Data on lesions affecting various organs and systems are summarized, with a focus on cardiovascular complications, including myocarditis, which may develop either as a result of direct myocardial infection by the virus or secondary to systemic inflammatory responses and cytokine storm. Modern therapeutic strategies, including antiviral and immunomodulatory approaches, are analyzed. Nucleoside analogues, particularly GS-441524, which inhibits viral RNA replication, are highlighted as the most promising. The emergence of Russian drugs such as “KoronaCat” and “Melon-­V” has been noted; however, the risk of resistant strain development remains a concern. Thus, feline infectious peritonitis continues to represent one of the most pressing problems in veterinary medicine. The systematization of available data underscores the need for further studies aimed at clarifying the pathogenesis, improving diagnostic criteria, and developing effective antiviral therapies.

Full Text

Введение

Коронавирусы кошек (FCoVs) — это оболочечные РНК-вирусы, принадлежащие к семейству Coronaviridae рода Alphacoronavirus. FCoVs эндемичны для домашних кошек. В Российской Федерации коронавирусная инфекция впервые была выявлена в 1990‑х гг. у чистокровных животных [1]. Инфекционный вирусный перитонит кошек (FIP) — это иммунозависимое инфекционное заболевание, приводящее к летальному исходу [2–4]. Болеют преимущественно молодые и старые животные. Заболевание может протекать в экссудативной и гранулематозной формах, в патологический процесс помимо печени и почек вовлекаются также сердце, глаза и мозг. Поврежденные вирусом макрофаги утрачивают способность экспрессировать вирусные антигены на своей поверхности, в результате чего специфические антитела не могут идентифицировать пораженные клетки. Наиболее информативно иммуногистохимическое исследование [5].

Различают два серотипа коронавируса: первый (кошачий коронавирус FECV) вызывает коронавирусный энтерит у кошек, второй (вирус инфекционного перитонита кошек FIPV) вызывает инфекционный вирусный перитонит у кошек с высоким уровнем смертности [1]. Доказано, что FIPV является мутацией FECV, которая возникает в 8…10 % случаев [2, 6]. Иногда безвредные серотипы могут приводить к смертельным мутациям [7].

Цель обзора — комплексное исследование инфекционного перитонита кошек при коронавирусной инфекции с охватом широкого спектра аспектов, включая эпизоотологию, методы выявления, механизмы развития заболевания, профилактические меры, терапевтические подходы и прогнозирование исходов болезни.

Материалы и методы исследования

В рамках данного исследования были задействованы теоретические подходы, включая изучение и систематизацию актуальных публикаций российских и зарубежных исследователей. Поиск соответствующих материалов производился с использованием электронных баз данных, таких как Google Scholar, CrossRef, eLIBRARY.RU и cyberleninka.ru, по ключевым словам «инфекционный перитонит кошек» и «FIP» за 2018–2025 гг. Источники отбирались в соответствии с содержанием в них актуальной информации об эпизоотической ситуации, диагностических подходах, патогенетических механизмах, а также стратегиях профилактики и лечения указанного заболевания.

Результаты исследования и обсуждение

FCoVs обнаружены у домашних и диких кошек, а также у других животных с респираторным синдромом [2, 4, 8, 9]. Мыши и хорьки восприимчивы к инфекции [2]. Коронавирусы (CoV) способны к рекомбинации, и большинство инфекций CoV являются зоонозными [10]. Способность адаптироваться к новым хозяевам объясняется высокой частотой мутаций, из-за низкой надежности вирусной РНК-полимеразы [11]. Летучие мыши являются резервуаром для α- и β-коронавирусов [12], которые встречаются у людей, собак, кошек, свиней, мышей, крыс, лошадей и крупного рогатого скота [13–16.].

Вирус SARS-CoV‑2 может размножаться в организме кошек и собак [17–22] и передаваться при контакте с людьми, больными COVID‑19. PHK SARS-CoV‑2 выделяется из слизистой полости рта и носа, а также шерсти кошек, но анализы ОТ-ПЦР и ИФА не всегда дают положительный результат [23, 24]. Внешняя оценка качества по тестированию РНК вируса SARS-CoV‑2 методом ПЦР выявила основные ошибки, допускаемые в ходе исследований [25]. Также были обобщены структурные особенности коронавируса SARS-CoV‑2, описаны клеточные механизмы, которые делают некоторых пациентов наиболее восприимчивыми к инфекции [26].

Распространенность FCoV-инфекции среди кошек достигает 90 %. Вирус выделяется с калом и передается фекально-­оральным путем [27, 28]. В 10 % случаев развивается инфекционный перитонит у кошек (FIP) [29], когда высоковирулентные FCoV возникают заново в результате мутации внутри особи [30], которая приводит к системной инфекции [31], появлению различных клинических признаков и последующей гибели животного в течение восьми-­девяти дней после постановки диагноза [32]. Синдром системной воспалительной реакции, полиорганная недостаточность и развитие симптомов сепсиса делают некоторых пациентов более восприимчивыми к инфекции [33–35].

Вакцин для профилактики FCoV не существует. Инфекционный перитонит кошек (FIP), вызываемый коронавирусом кошек (FCoV), без лечения приводит к летальному исходу [36]. Предлагались различные противовирусные и иммуномодулирующие схемы лечения FIP, которые не были признаны эффективными [37]. Однако нелицензированный аналог нуклеозида GS‑441524 перспективен для кошек с FIP [38–42] и обладает свой­ством прерывать цепь РНК вируса. На российском рынке лекарственных средств для лечения FIP организован выпуск препарата КоронаКэт, основанный на нуклеозидном аналоге GS‑441524, а также апробируется препарат Melon-­V, но есть опасения по поводу появления мутантов [43].

У кошек с FIP наблюдается повышенная транскрипция воспалительных цитокинов в сердечной мышце и печени, хотя этот показатель в сердце был ниже, чем в печени, что свидетельствует о более позднем и реактивном вовлечении миокарда в процесс заболевания [44]. Могут развиваться выпоты в полости тела, пиогранулематозные поражения различных органов, включая мозг и глаза [45], дерматологические проявления [46], а также поражения миокарда или миокардит [41, 47, 48]. Миокардит может проявляться различными клиническими симптомами, включая систолическую и/или диастолическую дисфункцию, утолщение стенок желудочков и аномальные движения стенок, перикардиальный выпот и электрокардиографические изменения [49]. Воспаление миокарда может быть вызвано инфекцией Streptococcus suis [50], Bartonella henselae [51, 52] или Salmonella typhimurium [53], а также паразитами, такими как Hepatozoon silvestris [54], Sarcocystis felis [55] и Toxoplasma gondii [56, 57], а также неинфекционными причинами. SARS-CoV‑2 может вызывать миокардит у людей (связан с воспалительной реакцией и цитокиновым штормом [58]) и сердечную недостаточностью у кошек [59, 60]. Однако неясно, вызывал ли вирус миокардит напрямую или же в результате мультисистемного воспалительного синдрома, как это было описано у людей [61]. FCoV обнаружен при вскрытии в миокарде кошек [59] с диффузным гранулематозным воспалением сердца при FIP [62]. Модифицированные критерии Дюка для диагностики инфекционного эндокардита у людей [63], собак [64] и кошек [57] включают cTnI >1,0 нг/мл и/или обнаружение вируса. Вторичные критерии включают лихорадку, сердечные шумы, желудочковую аритмию, снижение систолической функции левого желудочка, гетерогенность миокарда левого желудочка, перикардиальный выпот и лабораторные изменения, такие как воспалительная лейкограмма, анемия, тромбоцитопения и гипоальбуминемия. Миокардит предполагается при наличии двух основных критериев или одного основного критерия и трех вторичных критериев [65]. Миокардит может быть важным симптомом FIP и эффективно лечится антивирусными препаратами в сочетании с симптоматическим лечением сердечно-­сосудистыми препаратами. Эндомиокардиальная биопсия считается золотым стандартом диагностики миокардита у людей [66]. Однако, поскольку эта процедура является очень инвазивной для кошек, диагноз часто ставится на основании анамнеза и клинических данных в сочетании с лабораторными показателями, такими как тропонин I [67], ЭКГ и эхокардиография. Некоторые лабораторные изменения, такие как повышение уровня белков острой фазы и лихорадка, могут быть связаны с самим FIP [45, 68].

Заключение

Коронавирусы характеризуются высокой частотой мутаций и способностью к межвидовой передаче, что обусловливает их широкое распространение среди домашних и диких животных. FCoV — основной этиологический агент FIP, который развивается приблизительно у 10 % инфицированных особей вследствие мутаций вируса в организме хозяина. Также заболевание сопровождается системным воспалительным процессом, полиорганными поражениями и высокой летальностью.

Специфические вакцины для профилактики и лечения FIP отсутствуют. Наибольшую перспективу демонстрируют нуклеозидные аналоги, в частности GS‑441524, применение которых в ряде случаев приводит к клиническому выздоровлению, однако сохраняются риски формирования резистентных вариантов вируса. Особую значимость имеют осложнения со стороны сердечно-­сосудистой системы, включая миокардит, который может формироваться как следствие прямого воздействия коронавирусной инфекции, так и в рамках системной воспалительной реакции. Поражение миокарда у кошек с FIP сопровождается характерными клиническими и морфологическими изменениями, однако диагностика данного состояния затруднена из-за ограничений в применении инвазивных методов. В большинстве случаев она основывается на клинических данных, лабораторных показателях, а также результатах инструментальных исследований.

Таким образом, FIP остается актуальной проблемой ветеринарной медицины. Дальнейшие исследования направлены на уточнение патогенеза заболевания, разработку надежных диагностических критериев и создание эффективных противовирусных средств, позволяющих снизить летальность и контролировать распространение FIP.

×

About the authors

Sergey Vladimirovich Laptev

Moscow State Academy of Veterinary Medicine and Biotechnology — MBA named after K.I. Skryabin

Email: x9131078824@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-3023-6976
SPIN-code: 4867-7430

Candidate of Biology, Associate Professor, Associate Professor of the Department of Epizootology and Organization of Veterinary Business

23 Akademika Skryabina St., Moscow, 109472, Russian Federation

Marina Viktorovna Selina

Moscow State Academy of Veterinary Medicine and Biotechnology — MBA named after K.I. Skryabin

Author for correspondence.
Email: project@mgavm.ru
ORCID iD: 0000-0001-8201-1042
SPIN-code: 1372-2660

Candidate of Pedagogy, Associate Professor of the Department of Economics and Digitalization in the Agro-­Industrial Complex

23 Akademika Skryabina St., Moscow, 109472, Russian Federation

References

  1. Petrova OU, Kosyaev NI, Efimova IO, Mozhaeva AA. Infektsionnyi peritonit koshek [Feline infectious peritonitis]. Agrarnaya nauka — sel’skomu khozyaistvu [Agricultural science — agriculture]. Barnaul: Altai State Agrarian University. 2018. P. 422–423. (In Russ.). EDN: YWLLDE
  2. Barsegyan LS, Sukharev OI, Kulikov EV. Feline infectious viral peritonitis (literature review). Actual Questions of Veterinary Biology. 2015;(1):16–23. (In Russ.). EDN: TLXQFZ
  3. Ivanova LE, Kravchenko VM. Clinical significance of anemia in feline infectious peritonitis. Vestnik nauchno-­tekhnicheskogo tvorchestva molodezhi Kubanskogo GAU [Bulletin of Scientific and Technical Creativity of Youth of Kuban State Agrarian University]. 2018;(4):26–28. (In Russ.). EDN: QNQIZL
  4. Lenskaya ES, Buguev EG. Pathomorphology of coronavirus infection in cats. Actual problems of agriculture in mountain areas. Gorno-­Altaysk; 2021. P. 161–165. (In Russ.). EDN: TYKGSF
  5. Paltseva ED, Pleshakova VI. Coronaviruses in the population of domestic cats. Vestnik Omsk SAU. 2022;(1):94–101. (In Russ.). doi: 10.48136/2222-0364_2022_1_94 EDN: BBEVCT
  6. Mikhailovskaya PA, Kondrashkina KM, Simonova EI, Rystsova EO. New approaches in treatment of feline infectious peritonitis virus infection. Bulletin of Science and Practice. 2019;5(5):210–220. (In Russ.). doi: 10.33619/2414-2948/42/29 EDN: TRGYXL
  7. Kostyukova ES, Bakirova AA, Poroshin KV. Infectious peritonitis of the Felidae family. Ehlektronnyi nauchnyi zhurnal [Electronic Scientific Journal]. 2016;(12–1):40–42. (In Russ.). EDN: XHJWPN
  8. Gribova IV, Petrova OG. Feline infectious peritonitis. Agroprodovol’stvennaya politika Rossii [Agri-­Food Policy of Russia]. 2012;(10):60–63. (In Russ.). EDN: VOBPGH
  9. Kravchenko VM, Ivanova LE. Epizootological features of viral cat peritonitis. In: Nauchnoe obespechenie agropromyshlennogo kompleksa. Krasnodar [Scientific Support of the Agro-­Industrial Complex. Krasnodar: Kuban State Agrarian University named after I.T. Trubilin]; 2019. p. 448–449. (In Russ.). EDN: OIQMIV
  10. Ye ZW, Yuan S, Yuen KS, Fung SY, Chan CP, Jin DY. Zoonotic origins of human coronaviruses. International Journal of Biological Sciences. 2020;16(10):1686–97. doi: 10.7150/ijbs.45472
  11. Drake JW, Holland JJ. Mutation rates among RNA viruses. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 1999;96(24):13910–13913. doi: 10.1073/pnas.96.24.13910
  12. Woo PC, Lau SK, Lam CS, Tsang AK, Hui SW, Fan RY, et al. Discovery of seven novel mammalian and avian coronaviruses in the genus Deltacoronavirus supports bat coronaviruses as the gene source of Alphacoronavirus and Betacoronavirus and avian coronaviruses as the gene source of Gammacoronavirus and Deltacoronavirus. Journal of Virology. 2012;86(7):3995–4008. doi: 10.1128/jvi.06540-11
  13. Bourgarel M, Pfukenyi DM, Boué V, Chidoti F, Mazarati JB, Grosbois V, et al. Circulation of Alphacoronavirus, Betacoronavirus and Paramyxovirus in Hipposideros bat species in Zimbabwe. Infection, Genetics and Evolution. 2018;58:253–257. doi: 10.1016/j.meegid.2018.01.007
  14. Monchatre-­Leroy E, Boué F, Boucher JM, Renault C, Sabatier P, Decors A, et al. Identification of Alpha and Beta Coronavirus in wildlife species in France: bats, rodents, rabbits, and hedgehogs. Viruses. 2017;9(12):364. doi: 10.3390/v9120364
  15. Pan Y, Tian X, Qin P, Wang B, Zhao P, Yang YL, et al. Discovery of a novel swine enteric alphacoronavirus (SeACoV) in southern China. Veterinary microbiology. 2017;211:15–21. doi: 10.1016/j.vetmic.2017.09.003
  16. Wan Z, Zhang Y, He Z, Zheng S, Ma C, Wang J, et al. A melting curve-­based multiplex RT-qPCR assay for simultaneous detection of four human coronaviruses. International Journal of Molecular Sciences. 2016;17(11):1880. doi: 10.3390/ijms17111880
  17. Fritz M, Rosolen B, Krafft E, Panseri S, Lecollinet S, Pozzi N, et al. High prevalence of SARS-CoV-2 antibodies in pets from COVID-19+ households. One Health. 2021;11:100192. doi: 10.1016/j.onehlt.2020.100192
  18. Hamer SA, Pauvolid-­Corrêa A, Zecca IB, Davila E, Auckland LD, Roundy CM, et al. Natural SARS-CoV-2 infections, including virus isolation, among serially tested cats and dogs in households with confirmed human COVID-19 cases in Texas, USA. Viruses. 2020;13(5):938. doi: 10.3390/v13050938
  19. Michelitsch A, Hoffmann D, Wernike K, Lange E, Beer M, Renneker S. Occurrence of antibodies against SARS-CoV-2 in the domestic cat population of Germany. Vaccines. 2020;8(4):772. doi: 10.3390/vaccines8040772
  20. Patterson EI, Elia G, Grassi A, Giordano A, Desario C, Medardo M, et al. Evidence of exposure to SARS-CoV-2 in cats and dogs from households in Italy. Nature Communications. 2020;11(1):6231. doi: 10.1038/s41467-020-20097-0
  21. Shi J, Wen Z, Zhong G, Yang H, Wang C, Huang B, et al. Susceptibility of ferrets, cats, dogs, and other domesticated animals to SARS-coronavirus 2. Science. 2020;368(6494):1016–1020. doi: 10.1126/science.abb7015
  22. Zhang Q, Zhang H, Gao J, Huang K, Yang Y, Hui X, et al. A serological survey of SARS-CoV-2 in cats in Wuhan. Emerging Microbes and Infections. 2020;9(1):2013–2019. doi: 10.1080/22221751.2020.1817796
  23. Hosie MJ, Hofmann-­Lehmann R, Hartmann K, Egberink H, Truyen U, Baechlein C, et al. Anthropogenic infection of cats during the 2020 COVID-19 pandemic. Viruses. 2021;13(2):185. doi: 10.3390/v13020185
  24. Temmam S, Barbarino A, Maso D, Behillil S, Enouf V, Huon C, et al. Absence of SARS-CoV-2 infection in cats and dogs in close contact with a cluster of COVID-19 patients in a veterinary campus. One Health. 2020;10:100164. doi: 10.1016/j.onehlt.2020.100164
  25. Mezentseva NI, Laptev SV. Razrabotka programm mezhlaboratornykh slichitel’nykh ispy-tanii i organizatsiya vneshnei otsenki kachestva PTSR-diagnostiki COVID-19 [Development of programs for interlaboratory comparative testing and organization of external quality assessment of PCR diagnostics of COVID-19]. Spravochnik zavedu-­yushchego KDL [Handbook of the Head of the Clinical Diagnostic Laboratory]. 2020;(12):6–10. (In Russ.). EDN: ZQJKSC
  26. Laptev SV, Mezentseva NI. Cellular and humoral defense mechanisms in coronavirus infection. Spravochnik zavedu-­yushchego KDL [Handbook of the Head of the Clinical Diagnostic Laboratory]. 2021;(5):34–43. (In Russ.). EDN: PTCMFV
  27. Pedersen NC. A review of feline infectious peritonitis virus infection: 1963–2008. Journal of Feline Medicine and Surgery. 2009;11(4):225–258. doi: 10.1016/j.jfms.2008.09.008
  28. Pedersen NC, Allen CE, Lyons LA. Pathogenesis of feline enteric coronavirus infection. Journal of Feline Medicine and Surgery. 2008;10(6):529–541. doi: 10.1016/j.jfms.2008.02.006
  29. Tasker S, Addie DD, Egberink H, Belák S, Boucraut-­Baralon C, Frymus T, et al. Feline infectious peritonitis: European Advisory Board on Cat Diseases guidelines. Viruses. 2023;15(9):1847. doi: 10.3390/v15091847
  30. Vennema H, Poland A, Foley J, Pedersen NC. Feline infectious peritonitis viruses arise by mutation from endemic feline enteric coronaviruses. Virology. 1998;243(1):150–157. doi: 10.1006/viro.1998.9045
  31. Malbon AJ, Michalopoulou E, Meli ML, Schwartz A, Bounous DI, Lutz H, et al. Colony stimulating factors in early feline infectious peritonitis virus infection of monocytes and in end stage feline infectious peritonitis: a combined in vivo and in vitro approach. Pathogens. 2020;9(11):893. doi: 10.3390/pathogens9110893
  32. Fischer Y, Ritz S, Weber K, Sauter-­Louis C, Hartmann K. Randomized, placebo-­controlled study of the effect of propentofylline on survival time and quality of life of cats with feline infectious peritonitis. Journal of Veterinary Internal Medicine. 2011;25(6):1270–1276. doi: 10.1111/j.1939-1676.2011.00806.x
  33. Laptev SV, Tatarnikova NA, Sidorova KA, Novikova OV. Pathogenesis and markers of sepsis. Transactions of Taurida Agricultural Science. 2023;(35):182–197. (In Russ.). EDN: OBFCRQ
  34. Pigina SU, Laptev SV, Tatarnikova NA. Peculiarities of pathogenesis, diagnosis and prognosis of outcome of septic diseases of small domestic animals. Veterinary, Zootechnics and Biotechnology. 2024;(10):12–22. (In Russ.). doi: 10.36871/vet.zoo.bio.202410002 EDN: FEEUCL
  35. Laptev SV, Pimenov NV, Marzanova SN, Permyakova KU, Ivannikova R.F. Heuristic approaches to risk assessment and prognosis of sepsis in dogs. International Journal of Veterinary Medicine. 2023;(3):35–50. (In Russ.). doi: 10.52419/issn2072-2419.2023.3.35 EDN: TNDYPT
  36. Sparkes AH, Gruffydd-­Jones TJ, Harbour DA. Feline infectious peritonitis: a review of clinicopathological changes in 65 cases, and a critical assessment of their diagnostic value. Veterinary Record. 1991;129(10):209–212. doi: 10.1136/vr.129.10.209
  37. Delaplace M, Huet H, Gambino A, Le Poder S. Feline coronavirus antivirals: a review. Pathogens. 2021;10(9):1150. doi: 10.3390/pathogens10091150
  38. Addie DD, Covell-­Ritchie J, Jarrett O, Fosbery M. Rapid resolution of non-effusive feline infectious peritonitis uveitis with an oral adenosine nucleoside analogue and feline interferon omega. Viruses. 2020;12(11):1216. doi: 10.3390/v12111216
  39. Dickinson PJ, Bannasch M, Thomasy SM, Murthy VD, Vernau KM, Liepnieks M, et al. Antiviral treatment using the adenosine nucleoside analogue GS-441524 in cats with clinically diagnosed neurological feline infectious peritonitis. Journal of Veterinary Internal Medicine. 2020;34(4):1587–1593. doi: 10.1111/jvim.15780
  40. Jones S, Novicoff W, Nadeau J, Evans S, Stuetzer B, Bannasch M. Unlicensed GS-441524-like antiviral therapy can be effective for at-home treatment of feline infectious peritonitis. Animals (Basel). 2021;11(8):2257. doi: 10.3390/ani11082257
  41. Murphy B, Perron M, Murakami E, Bauer L, Park Y, Knight V, et al. The nucleoside analog GS-441524 strongly inhibits feline infectious peritonitis virus in tissue culture and experimental cat infection studies. Veterinary Microbiology. 2018;219:226–233. doi: 10.1016/j.vetmic.2018.04.026
  42. Zuzzi-­Krebitz AM, Buchta K, Bergmann M, Schlottau K, Hoffmann D, Beer M, et al. Short treatment of 42 days with oral GS-441524 results in equal efficacy as the recommended 84-day treatment in cats suffering from feline infectious peritonitis with effusion: a prospective randomized controlled study. Viruses. 2024;16(7):1144. doi: 10.3390/v16071144
  43. Voskresenskiy AA. Peculiarities of clinical picture and modern approaches to treatment of coronavirus enteritis in cats (review article). Agrarian journal of the Upper Volga Region. 2024;(1):38–42. (In Russ.). doi: 10.35523/2307-5872-2024-46-1-38-42 EDN: MXMVUW
  44. Malbon AJ, Fonfara S, Meli ML, Willi B, Hartmann K, Lutz H. Feline infectious peritonitis as a systemic inflammatory disease: contribution of liver and heart to the pathogenesis. Viruses. 2019;11(12):1144. doi: 10.3390/v11121144
  45. Hartmann K. Feline infectious peritonitis. The Veterinary clinics of North America. Small Animal Practice. 2005;35(1):39–79. doi: 10.1016/j.cvsm.2004.10.011
  46. Bauer BS, Kerr ME, Sandmeyer LS. Positive immunostaining for feline infectious peritonitis (FIP) in a Sphinx cat with cutaneous lesions and bilateral panuveitis. Veterinary Ophthalmology. 2013;16(Suppl 1):160–163. doi: 10.1111/vop.12044
  47. Kotsyumbas GI, Khalaniia MR. Pathomorphology of cats with myocardial infectious peritonitis. Scientific Messenger of LNU of Veterinary Medicine and Biotechnologies. 2019;21:177–184. doi: 10.32718/nvlvet9631
  48. Repyak K, Atiee G, Cook A, Chapman M, Lee H, Burgess S, et al. Thoracic radiographic findings in cats with feline infectious peritonitis. Journal of Feline Medicine and Surgery. 2025;27(2):1098612X241309823. doi: 10.1177/1098612X241309823
  49. Lampejo T, Durkin SM, Bhatt N, Guttmann O. Acute myocarditis: aetiology, diagnosis and management. Clinical medicine (Lond). 2021;21(5): e505–510. doi: 10.7861/clinmed.2021-0121
  50. Wood J, Reagan KL, Gunther-­Harrington C, Sykes JE. Identification of Streptococcus suis in a cat with endomyocarditis. Journal of Feline Medicine and Surgery Open Reports. 2021;7(1):20551169211012346. doi: 10.1177/20551169211012346
  51. Joseph JL, Oxford EM, Santilli RA. Transient myocardial thickening in a Bartonella henselae–positive cat. Journal of Veterinary Cardiology. 2018;20(3):198–203. doi: 10.1016/j.jvc.2018.04.003
  52. Varanat M, Broadhurst J, Linder KE, Maggi RG, Breitschwerdt EB. Identification of Bartonella henselae in 2 cats with pyogranulomatous myocarditis and diaphragmatic myositis. Veterinary Pathology. 2012;49(4):608–611. doi: 10.1177/0300985811404709
  53. Vercelli A, Lo Cicero E, Pazzini L. Salmonella typhimurium endocarditis and myocarditis in a cat. Case Reports in Veterinary Medicine. 2019;2019:7390530. doi: 10.1155/2019/7390530
  54. Kegler K, Nufer U, Alic A, Posthaus H, Olias P, Basso W. Fatal infection with emerging apicomplexan parasite Hepatozoon silvestris in a domestic cat. Parasites Vectors. 2018;11:428. doi: 10.1186/s13071–018–2992–4
  55. Elsheikha HM, Kennedy FA, Murphy AJ, et al. Sarcocystosis of Sarcocystis felis in cats. Journal of the Egyptian Society of Parasitology. 2006;36:1071–1085.
  56. Romito G, Fracassi F, Cipone M. Transient myocardial thickening associated with acute myocardial injury and congestive heart failure in two Toxoplasma gondii-­positive cats. Journal of Feline Medicine and Surgery Open Reports. 2022;8(2):20551169221131266. doi: 10.1177/20551169221131266
  57. Simpson KE, Devine BC, Gunn-­Moore D. Suspected Toxoplasma-­associated myocarditis in a cat. Journal of Feline Medicine and Surgery. 2005;7(3):203–208. doi: 10.1016/j.jfms.2004.08.004
  58. Shu H, Zhao C, Wang DW. Understanding COVID-19-related myocarditis: pathophysiology, diagnosis, and treatment strategies. Cardiology plus. 2023;8(2):72–81. doi: 10.1097/CP9.0000000000000046
  59. Ernandes MA, Cantoni AM, Armando F, Corradi A, Ressel L, Tamborini A. Feline coronavirus-­associated myocarditis in a domestic longhair cat. Journal of Feline Medicine and Surgery Open Reports. 2019;5(1):2055116919879256. doi: 10.1177/2055116919879256
  60. Ferasin L, Fritz M, Ferasin H, Becquart P, Corbet S, Ar Gouilh M, et al. Infection with SARS-CoV-2 variant B.1.1.7 detected in a group of dogs and cats with suspected myocarditis. Veterinary Record. 2021;189(9): e944. doi: 10.1002/vetr.944
  61. Morris SB, Schwartz NG, Patel P, Abbo L, Beauchamps L, Balan S, et al. Case series of multisystem inflammatory syndrome in adults associated with SARS-CoV-2 infection — United Kingdom and United States, March–August 2020. MMWR. Morbidity and Mortality Weekly Report. 2020;69(40):1450–1456. doi: 10.15585/mmwr.mm6940e1
  62. Yoshida T, Ichikawa N, Koike M, Saito M, Shimizu H. Two feline cases of dilated cardiomyopathy-like disease caused by feline infectious peritonitis virus. Journal of Animal Clinical Medicine. 2016;25:148–152. doi: 10.11252/dobutsurinshoigaku.25.148
  63. Li JS, Sexton DJ, Mick N, Nettles R, Fowler VG Jr, Ryan T, et al. Proposed modifications to the Duke criteria for the diagnosis of infective endocarditis. Clinical Infectious Diseases. 2000;30(4):633–638. doi: 10.1086/313753
  64. MacDonald KA. Infective endocarditis in dogs: diagnosis and therapy. Veterinary clinics of North America. Small Animal Practice. 2010;40(3):665–684. doi: 10.1016/j.cvsm.2010.03.010
  65. Lakhdhir S, Viall A, Alloway E, Bommer K, Fulcher M, Clary L, et al. Clinical presentation, cardiovascular findings, etiology, and outcome of myocarditis in dogs: 64 cases with presumptive antemortem diagnosis and 137 cases with postmortem diagnosis only (2004–2017). Journal of Veterinary Cardiology. 2020;30:44–56. doi: 10.1016/j.jvc.2020.05.003
  66. Caforio ALP, Pankuweit S, Arbustini E, Basso C, Gimeno-­Blanes J, Felix SB, et al. Current state of knowledge on aetiology, diagnosis, management, and therapy of myocarditis: a position statement of the European Society of Cardiology Working Group on Myocardial and Pericardial Diseases. European Heart Journal. 2013;34(33):2636–2648. doi: 10.1093/eurheartj/eht210
  67. Langhorn R, Willesen JL. Cardiac troponins in dogs and cats. Journal of Veterinary Internal Medicine. 2015;30(1):36–50. doi: 10.1111/jvim.13801
  68. Thayer V, Gogolski S, Felten S, Lappin M, Pedersen N, Hartmann K, et al. 2022 AAFP/EveryCat Feline Infectious Peritonitis diagnosis guidelines. Journal of Feline Medicine and Surgery. 2022;24(10):905–933. doi: 10.1177/1098612X221118761

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2026 Laptev S.V., Selina M.V.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.